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首页医源资料库在线期刊中华医学研究杂志2007年第7卷第5期

器官保存液及其分子机制的研究进展*

来源:《中华医学研究杂志》
摘要:【摘要】器官保存液应用于心脏移植,扩大了心脏移植术的适用范围,提高了心脏移植术的成功率。但有效保存时间较短(4~6h),限制了终末期心脏病人的手术治疗。本文介绍了:(1)已有的器官保存液。(2)一种新的心脏停搏剂-钾离子开放剂(PCOs),其不仅可以停搏心脏,而且对心肌细胞、冠状动脉内皮细胞和平滑肌细......

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【摘要】  器官保存液应用于心脏移植,扩大了心脏移植术的适用范围,提高了心脏移植术的成功率。但有效保存时间较短(4~6h),限制了终末期心脏病人的手术治疗。本文介绍了:(1)已有的器官保存液;(2)一种新的心脏停搏剂-钾离子开放剂(PCOs),其不仅可以停搏心脏,而且对心肌细胞、冠状动脉内皮细胞和平滑肌细胞也有较好的保护效果;(3)新型的能量物质添加剂—ATP脂质体(ATP-Load liposomes, ATP-L);(4)腺苷介导的心肌保护作用的具体机制;(5)心肌缺血再灌注的损伤机制及如何减轻缺血再灌注损伤方法及分子机制;(6)心脏受到损伤刺激时的内源性保护机制。

【关键词】  器官保存液;钾离子开放剂;ATP-L;缺血再灌注损伤;内源性保护机制


    心脏移植术被确认为终末期心脏病的重要治疗方法,其中一个决定因素是供体心脏的保存。目前,心脏冷缺血有效保存时间被限制在4~6h ,严重影响了心脏移植术的应用。对器官保存液进行改进,可延长供体心脏的保存时间和保存质量,扩大了心脏移植术的应用范围,提高了手术的成功率和病人远期的生存率。但延长供体心脏的停留时间,不可避免地加重了心肌损伤[1]。本文将介绍:首先在供体心脏采集后,用一种新型的停搏剂-钾离子开放剂[PCOs)。继而加入一种新型的能量物质(ATP脂质体(ATP-Load liposomes,ATP-L)],作为供体心脏离体保存的能量物质;也介绍了ATP分解产物腺苷和肌苷心肌保护作用的分子机制。接着系统地介绍了能减轻缺血再灌注的添加剂及其分子机制。最后介绍了缺血再灌注期一些内源性心肌保护作用及分子机制。

    1  目前常用的心脏保存液介绍

    1.1  UW液(University of Wisconsin solution)  UW 液是美国威斯康星大学Belzer 及其小组人员研制的一种新型保存液: (1)渗透压由无代谢活性的惰性成分来维持,如乳糖酸和木棉糖;(2)加入了一种胶体成分,羟乙基淀粉(HES);(3)加入氧自由基清除剂,如谷胱甘肽、别嘌呤醇等。UW 液被广泛应用于各种器官的保存,均有很好的保存效果。但是UW 液中高钾(125mmol/L)对心肌细胞及冠状血管内皮细胞能造成损害,同时UW 液的高黏滞性也减弱其保存效果。在UW液中加入caspases抑制剂可以对抗高钾停搏液和复温后细肌丝收缩功能的异常,其可能机制为维持心肌细胞内肌丝的有序排列[2]。

    1.2  ST液(St. Thomas' Hospital cardioplegia)      ST液是一种细胞外类晶体保存液。在ST液中加入磷酸二酯酶抑制剂可以抑制心肌细胞和血管平滑肌细胞Ⅲ型磷酸二酯酶的活性,提高心肌细胞cAMP的水平,激活肌浆网钙泵的活性,促进肌浆网对Ca2+摄入[3]。肌浆网对Ca2+摄入的增加也相应地增加了细胞质Ca2+的浓度,这可能是磷酸二酯酶抑制剂提高峰收缩压、降低舒张压和改善心功能的原因。在ST液中加入CAPE(Caffeic acid phenethyl, CAPE),可以提高心肌抗氧化的能力,对抗缺血再灌注损伤[4]。

    1.3  HTK液(histidine-tryptophan-ketoglutarate solution)      HTK液是由 Bretschneider 于1975年创制的,并于1979年用于心脏手术,1985年德国心脏外科界应用作为心肌保存液成功地进行了心脏移植手术, HTK液也先后成功地应用于肾、肝脏、胰腺的移植。其组成特点:(1)含钾量低;(2)含组氨酸/组氨酸盐缓冲系统,有较强的缓冲能力,组氨酸为有效的非渗透性因子,可防止内皮细胞肿胀;(3)含色氨酸,作为膜稳定剂,可防止组氨酸进入细胞内;(4)含甘露醇,作为羟自由基的清除剂,可防止氧自由基的损伤,同时兼有渗透支持的作用;(5)含α- 酮戊二酸及色氨酸,作为高能磷酸化合物的底物;⑹ HTK液粘度低,易于扩散至组织间隙,也易于在短时间内让器官降温[5]。

    1.4  Celsior液(Celsior solution)  Celsior 液是一种非永久性、稳定的、含乳糖酸和甘露醇及组氨酸缓冲系统的高渗性保存液, 高钠低钾是其主要特点。

    2  钾离子开放剂(PCOs)

    2.1  钾离子开放剂的研究进展  最近大量文献报道,添入钾离子开放剂的器官保存液在引起心脏停搏同时,几乎不会产生再灌注后心律失常和心肌收缩功能的异常,还可以显示出较好的心肌和冠状动脉保护效果[6~8]。目前应用的钾离子开放剂:nicorandil;pinacidil;diazoxide。

    2.2  高钾对心肌细胞的损害  高K+(UW液,K+138mmol/L)器官保存液在引起心脏停跳的同时,可引起心肌细胞内离子的紊乱[2]。细胞外液K+浓度升高干扰了Ca2+的内流,导致Ca2+的内流延缓,兴奋-收缩耦联受到一定影响。术后再灌注复跳后,可引起心肌收缩功能的异常。再灌注时,高K+还可以引起各种类型的心律失常,严重影响了移植心脏的功能。基于以上原因,临床上一般不用高K+的器官保存液保存心脏。

    2.3  钾通道开放剂在心脏保存液中的应用及机制  在4℃条件下,将二氮嗪(diazoxide,一种线粒体KATP通道开放剂)加入器官保存液,用这种保存液保存离体大鼠心脏10h,复灌注后,实验组心肌细胞明显减少了心肌酶(乳酸脱氢酶、磷酸肌酸激酶及谷草转氨酶) 的漏出量,对心肌细胞超微结构也有较好的保护作用,再灌注后反映了心功能的指标(左心室舒张末期压力、心率、左心室逐渐产生的压力、左心室压力变化率、冠脉流出量)恢复高于对照组[6]。二氮嗪保护心肌的可能机制为:通过降低线粒体外膜的通透性,减少细胞色素C的释放,防止线粒体嵴的变形,保存线粒体结构的完整,从而保护了线粒体的正常功能(如复合体Ⅰ维持线粒体内细胞色素C的隔离,维持心肌细胞内ATP的浓度)[6,7]。雷怕霉素是一种抗真菌药,实验显示它能缺血再灌注后大鼠心肌的梗死面积[8]。雷怕霉素诱导线粒体KATP通道开放的机制可能为:雷怕霉素与mTOR (mammalian target of rapamycin 雷怕霉素结合位点)结合,可以补偿地增加上游激酶如PI-3K(phosphatidylinositol-3 kinase 磷脂酰肌醇-3-激酶)和AKt,这些激酶在激活线粒体KATP通道时是非常重要的[8]。另外,线粒体区域化间隙内的mTOR允许生理性地开放线粒体KATP通道。雷怕霉素还可以通过上调NO的水平,从而开放线粒体KATP通道[8] 。以上研究提示,不论钾离子开放剂,还是通过其他一系列信号转导最终开放线粒体KATP通道的药物(如雷怕霉素开放线粒体KATP通道过程)都具有心肌保护作用。 线粒体KATP通道的开放保护心肌可能机制为:通过开放线粒体KATP通道,减少再灌注或再氧合时活性氧(reactive oxygen species ,ROS)的产生[6~8]。而其具体机制需进一步阐明,但钾离子开放剂替代高K+加入器官保存液的优点已有很多相关文献报道。然而,加入何种钾离子开放剂、加入剂量为多少,还需进一步的体内外实验和大量的临床实验来确定。

    3  加入器官保存液中的能量物质

    3.1  心肌细胞对能量的特殊要求  心脏为高能量依赖器官, 心脏功能发挥需要持续的能量供应, 但心肌本身并不储存能量, 心脏在缺血保存时,线粒体由于缺少代谢底物而减少了ATP生成。导致生物膜主动转运因缺乏ATP而不能正常运转,导致心肌细胞内离子的紊乱、代谢底物的缺乏和生化反应的异常,引起心肌细胞的损伤。

    3.2  现有心脏保存液中能量物质的应用  已有的器官保存液中加入的能量物质为: UW液中35.83g/L乳糖酸,ST液中28g/L乳酸酯,HTK液中1g/L 2-酮戊二酸,Celsior液中20g/L谷氨酸[9]。然而这些添加剂需心肌细胞经一系列的生化反应最终生成ATP,维持心肌细胞正常的代谢。

    3.3  ATP脂质体的特殊作用分析  将ATP脂质体(ATP-Load liposomes,ATP-L)直接加入Krebs液,显示出较好的保存效果。将ATP-L加入Krebs液, 用Langendorff灌注装置灌注离体的大鼠心脏,缺血再灌注后,可观测到实验组左心室舒张压(LVEDP)显著降低,很好地保护了心脏的舒张功能[10]。这可能是ATP-L在缺血期经扩散进入心肌细胞而提供了心肌细胞所需的能量,从而改善再灌注后细肌丝的机械功能。此外,用ATP酶处理后,仍有显著的心肌保护效应[10],提示这种能量物质较稳定,有望作为一种添加剂。ATP-L与以往加入器官保存液的糖类物质或加入参与三羧酸循环的能量物质不同,它可将细胞可以直接利用的物质(ATP不稳定,很快会分解)以脂质体的形式加入保存液,并能在较长的时间内发挥其功能。而是否能代替其他能量物质加入器官保存液,还需进一步的体内外实验和临床实验。

    4  腺苷及肌苷保护心肌的机制

    4.1  腺苷保护心肌的机制  腺苷是UW液的组成成分(1.34g/L)[9]。研究发现,腺苷的心肌保护作用是由A2AAR和A3AAR介导的[11]。保存液中加入A2AAR的激动剂,有明显的心肌保护作用,在应用腺苷时也能得到同样的结果。向犬齿和猪的冠状动脉内注入A2AAR选择激动剂CGS21680能有效地减少梗死面积,但在0.15~2.0μg/(kg·min)的剂量范围内可导致低血压或反射性心动过速[11]。另一项研究也证实,麻醉的狗在承受了90min LAD(左前降支)阻塞和2h再灌注后,静脉内输注A2AAR的激动剂ATL146e也能有效地减少心肌梗死面积[12]。当加入的剂量为较低剂量[0.01μg/(kg·min)]时,没有改变心率、全身血压和冠状动脉血流量。这个研究给我们一个启示,可以选择出一种无血管作用的但能有效地减轻再灌注损伤的A2AAR激动剂,测定出合适的剂量作为添加剂加入保存液。A2AAR激动剂还可以抑制再灌注后的炎症反应[12]。A3AAR激动剂IB-MECA减少心肌再灌注损伤是通过减少MPTP(mitochondrial permeability transition pore,MPTP,线粒体通透性转化孔)的开放[12]。因为MPTP开放,导致线粒体内的细胞色素C、凋亡蛋白酶激活因子(Apaf)和凋亡诱导因子(AIF)释放,从而诱导心肌细胞的凋亡。进一步阐明腺苷亚型受体介导的心肌保护作用,有望用特异性的腺苷亚型受体激动剂代替腺苷作为添加剂加入器官保存液,以期更好的心肌保护作用。

    4.2  肌苷  肌苷(inosine)为腺苷的代谢产物,过去一直认为肌苷是一种不活泼的代谢产物,但最近发现肌苷对心肌具有保护作用。肌苷可以特异性地抑制PARS[Poly(ADP-ribose)Polymerase synthetase]激活和调控的细胞死亡[13,14]。在给 Lewis大鼠做腹腔心脏异位移植手术中,供心经历1h缺血保存。结果显示,加入肌苷的保存组,明显提高了再灌注早期心肌和冠脉内皮细胞功能的恢复,移植后还可以持续对抗再灌注诱导的移植心脏冠脉内皮细胞功能的异常[13]。在此实验中肌苷已经显示出了较好的应用前景,但这方面的研究较少,是否能像腺苷一样作为添加剂,还需进一步的实验。

    5  缺血再灌注损伤机制

    缺血再灌注(ischemia-reperfusion,I/R)损伤是胸部暴露手术中最常见也是最主要的损伤,尤其是心脏移植手术。I/R损伤的发生机制尚未完全阐明,目前认为与氧自由基生成和钙超载、白细胞激活有关。

    6  减轻缺血再灌注损伤

    缺血再灌注(ischemia-reperfusion,I/R)损伤是供体心脏要承受的最主要和最严重的损伤,若将以下能减轻I/R损伤的物质作为添加剂加入保存液,很可能延长供体心脏体外停留时间。目前减轻I/R损伤主要研究方面为减少ROS产生和减轻钙超载;此外缺血预处理(ischemia preconditioning, IPC)和多次短暂缺血预处理均能减轻I/R损伤,虽然这两种预处理对心脏移植中几乎不可能应用,但其减轻I/R损伤的机制对器官保存液研究有所提示。

    6.1  减少ROS产生      已有的几种器官保存液中,减少ROS损伤的添加剂大多数为ROS消除剂(UW液中0.922g/L谷胱甘肽,Celsior液中还原型谷胱甘肽、组氨酸和甘露醇)[9]。但在减少ROS损伤方面,减少ROS产生优于清除ROS。

    减少线粒体的氧化作用中ROS生成和中性粒细胞(PMN)ROS生成、提高NAD+的水平和增强心脏抗氧化功能,均能减轻I/R损伤。此外,抗氧化剂可防止I/R诱导的心肌凋亡,减轻I/R损伤,黄嘌呤氧化酶(xanthine oxidase , XO)抑制剂也可减轻自由基损伤。

    6.1.1  减少线粒体的氧化作用中ROS生成      线粒体是细胞内ATP生成和进行各种生化反应的细胞器,也在缺血再灌注期最容易受到损伤的细胞器。若线粒体在I/R期出现不可逆的损伤,将会导致心肌细胞的凋亡。有研究显示 , NNMS(3-硝基-N-甲基-水杨乙酸)可以部分抑制从电子呼吸链复合体Ⅰ和Ⅲ漏出的电子,保护缺血的心肌细胞。其可能机制为:(1)通过减少线粒体ROS的生成,阻止线粒体钙超载;(2)减少因ROS产生而引起的线粒体PTP的开放,从而减少细胞色素C、凋亡蛋白酶激活因子(Apaf)和凋亡诱导因子(AIF)的释放。这些因子可以激活caspases激酶系统,诱导心肌细胞的凋亡[15]。

    6.1.2  减少中性粒细胞(PMN)I/R期ROS生成        由于缺血造成的损伤产生了具有吸引、激活中性粒细胞的物质,心脏再灌注期心肌重新获得血供,中性粒细胞被吸引、激活,激活的中性粒细胞耗氧量增加,产生大量的ROS。研究显示,潘氟隆乳剂(PFE)是一种全氟化碳(PFCs)(全氟化碳可以溶解氧气,具有抗炎作用和稳定中性粒细胞膜的性质),PFE可减轻PMN产生ROS [16]。再灌注期,由于中性粒细胞的呼吸爆发产生大量的ROS,造成心肌细胞和冠状动脉内皮细胞的损伤,PFE可抑制这一过程。

    6.1.3  增强心脏抗氧化功能  缺血期心肌细胞产生了大量的ROS,消耗了心脏自身的抗氧化物质,降低了心肌的抗氧化损伤的能力。丙酮酸有较好的心肌保护作用,但其起作用的具体机制尚未阐明,可能与改善灌注后的血液动力学、提高心内膜下血流量和恢复内源性抗氧化网络有关[17]。丙酮酸无毒性,可以通过扩散的方式进入细胞和细胞器内,发挥其功能,较适合作为保存液的添加剂。在ST液体中加入CAPE,首次证明可以提高I/R期大鼠心脏的抗氧化功能,因CAPE可阻止由I/R损伤诱导的脂质过氧化[4]。

    6.1.4  NAD+的水平与抗氧化功能  3-氨基苯甲酰胺 (3-aminobenzamide 3-AB)可影响ROS产生,在心脏保存液中加入PARS[Poly(ADP-ribose) synthetase  多聚ADP-核糖合成酶]抑制剂3-AB,可减轻心肌的缺血损伤,其可能机制为提高心肌细胞内NAD+的水平,影响ROS的产生。另外,3-AB心肌保护作用还与抑制心肌细胞凋亡有关[18]。 

    6.1.5  抗氧化剂减轻心肌细胞的凋亡  自由基清除剂tempol具有心肌保护作用,其可能机制为tempol抑制了STAT(signal transductor and activation of transcription,信号转导子及转录激活子)家族的磷酸化。STAT家族是各种信号转导的潜在的转录因子,包括细胞死亡的级联反应。研究心肌在受到缺血再灌注损伤时,STAT1和STAT3的磷酸化水平升高,tempol可以极大地降低STAT1和STAT3的磷酸化[19]。

    6.1.6  黄嘌呤氧化酶(xanthine oxidase , XO)      缺血再灌注期,黄嘌呤氧化酶(xanthine oxidase ,XO)活性增高,诱导ROS产生和细胞钙超载。用XO抑制剂别嘌呤预处理,可以降低XO的活性和减少ROS的产生,也可以降低XO活性增高诱导的细胞内Ca2+浓度的升高。其可能机制为黄嘌呤氧化酶活性的升高导致蛋白激酶C(PKC)和肌浆网Ca2+ATP酶(钙泵)活性降低,细胞外信号调节激酶和p38激酶的磷酸化增高;而别嘌呤增加PKC水平和增高钙泵活性,抑制细胞外信号调节激酶和p38激酶的磷酸化[20]。而另一项研究显示,XO的激活可以诱导心脏有潜力产生NO的亚硝酸无机盐产生NO,减轻心肌缺血再灌注损伤。因此,经这种途径XO的激活效应可能是保护性的而不是损伤[21]。

    6.2  减轻钙超载  Na+ /H+交换蛋白抑制剂减轻氧化应激造成的心肌细胞损伤,提高心肌的收缩功能,抑制心肌细胞质和线粒体Ca2+浓度的升高,降低乳酸脱氢酶的释放,增加组织ATP、磷酸肌酸和糖原的含量[22~24]。Na+/Ca2+交换蛋白抑制剂可对抗缺血再灌注引起的钙超载,还可以减轻钠超载,减少心肌酶的释放,提高再灌注后的心脏功能,增加再灌注后冠脉血流量,提高再灌注后高能磷酸化合物和ATP的恢复[25, 26]。以上都是不同抑制剂综合的心肌保护作用,但作为添加剂加入器官保存液,需要选择一种副作用小,心肌保护作用强的抑制剂。此外,麻醉预处理也能减轻钙超载,其作用机制与Na+/Ca2+交换蛋白抑制剂不重叠,与Na+/Ca2+交换蛋白抑制剂联合应用时心肌保护作用强于单独应用Na+/Ca2+交换蛋白抑制剂[27]。

    6.2.1  Na+ /H+交换蛋白抑制剂  预处理和再灌注时各自应用Na+ /H+交换蛋白抑制剂卡立泊来德(cariporide),都能明显减轻心肌细胞的损伤,包括自由基损伤,心肌细胞和内皮细胞的损伤(包括减少白细胞黏附和EF-1的释放)[22]。主要机制为减轻氧化应激造成的心肌细胞损伤。另外,卡立泊来德(cariporide)可减轻心肌损伤和缺血诱导的心律失常[22]。再灌注期加入Na+ /H+ 抑制剂HOE-642,提高了心肌的收缩功能。但是,心肌功能的改善不依赖反映心肌活性的指标,如心肌的梗死面积、心肌细胞特异性酶[23]。另一种高选择性的Na+ /H+交换蛋白抑制剂KR-33028,可以极大地抑制低氧诱导的细胞质和线粒体Ca2+浓度的升高和细胞色素C的释放,提高心肌收缩性,降低乳酸脱氢酶的释放,增加组织ATP、磷酸肌酸和糖原的含量,没有产生急性和随后的毒性作用。其可能机制为KR-33028抑制了细胞内钙超载和线粒体诱导细胞死亡的旁路[24]。

    6.2.2  Na+ /Ca2+交换蛋白抑制剂  Na+/Ca2+交换蛋白抑制剂MCC-135可以改善大鼠心脏缺血后,心肌收缩功能的异常。理论上Na+/Ca2+交换蛋白抑制剂可以维持钠超载,抑制钙超载,但是用MCC-135和盐酸阿米洛利(一种Na+/Ca2+交换蛋白抑制剂)同样可以减轻钠超载。抑制钙超载可能的机制为:抑制Na+依赖的Ca2+流入[25]。急性心肌梗死病人进行了冠脉介入手术后,MCC-135可减少心肌细胞肌酸激酶的(心肌细胞损伤的标志)释放,增加左心室舒张末期的容积,提高左心室的射血分数[25]。另一项研究显示,再灌注期加入一种新型的Na+/Ca2+交换蛋白抑制剂SEA0400,可降低左室舒张末期压,增加再灌注后冠脉血流量,提高再灌注后高能磷酸化合物和ATP的恢复。但是,再灌注期加入SEA0400,未能改善缺血引起的酸中毒,也增加了再灌注后室性心律失常的发生率和持续时间[26]。

    6.2.3  麻醉预处理(Anesthetic preconditioning , APC)  Na+/Ca2+交换蛋白抑制剂(KB-R7943, SEA0400)减轻了再灌注心肌舒张期细胞内Ca2+升高,而麻醉预处理(Anesthetic preconditioning, APC)减轻了再灌注心肌收缩期细胞内Ca2+浓度的升高。APC和KB-R7943或 SEA0400联合应用,产生的心肌保护作用强于APC、KB-R7943或 SEA0400各自单独应用。APC可降低肌浆网钙周期蛋白的分解,这也是APC心肌保护作用机制之一[27]。

    6.2.4  减轻线粒体钙超载   线粒体钙超载在缺血再灌注损伤中起着重要的作用,因为它可以诱导MPTP (mitochondrial permeability transition pore)开放,诱导细胞凋亡。用一种特异性线粒体Ca2+摄取抑制剂Ru360部分地抑制了线粒体Ca2+摄取,阻止了Ca2+诱导MPTP的开放,从而降低了再灌注诱导的心律失常的发生率,减轻了血液动力学的异常[28]。

    7  心脏内源性保护机制

    缺血再灌注期,心脏的红细胞生成素受体系统、阿片类受体系统和内源性降钙素基因相关肽受体激活均具有心肌保护作用。

    7.1  红细胞生成素-红细胞生成素受体系统  红细胞生成素受体不仅存在于血细胞系细胞,而且还存在于心脏。小鼠承受了30min左冠状动脉阻塞后再通24h后,结果显示RES(一种基因缺陷的小鼠,红细胞生成素受体仅存在于血细胞系)心肌梗死面积远大于WT(正常的小鼠),提示内源性的非血细胞的红细胞生成素-红细胞生成素受体系统在缺血再灌注损伤时具有重要的心肌保护作用[29]。重组的人源红细胞生成素 (rhEPO)可以极大减轻I/R诱导的NF-κB和AP-1激活,减少了TNF-α、IL-6和ICAM-1的产生,但提高了IL-10的水平。rhEPO减少I/R损伤,其机制可能与rhEPO的抗炎性质有关[30]。另一项研究显示,EPO的保护心肌对抗I/R损伤的机制可能为激活ERK 和PI-3K旁路,此旁路激活在对抗I/R损伤中起着重要的作用[31]。

    7.2  阿片类-阿片类受体系统  心脏有能力合成和释放三种主要阿片类活性肽,包括脑啡肽、内啡呔和强啡肽,也存在类阿片活性肽受体(μ、σ、К)。实验显示类阿片受体激活剂有心肌保护作用,其主要保护效应是由σ受体介导的[32]。再灌注后,减轻心肌损伤主要与激活σ阿片受体介导的抗凋亡促生存激酶信号旁路有关[33]。研究显示在冠状动脉阻塞前或阻塞再通5min后,给予σ阿片受体激动剂BW3T3U86或不可逆σ受体激动剂酚酞尼异硫氰酸酯(Fentanylisothiocyanate),能同效地减小经历30min冠脉阻塞2h再灌注后心肌的梗死面积[33]。

    7.3  内源性降钙素基因相关肽(Calcitonin  gene-related peptide ,CGRP )  内源性降钙素基因相关肽可诱导预处理样心肌保护功能,因为在大鼠心脏冠脉阻塞前5min直至再灌注结束注入CGRP,可明显减小心肌梗死面积。在离体心脏的再灌注中,CGRP可作为一种冠状动脉舒张剂,无快速耐受性。CGRP受体阻断剂BIBN4096BS可以减少冠脉的基础流量,说明CGRP在调解冠状动脉的收缩和舒张时起着重要的作用。缺血预处理心肌保护作用与内源性CGRP释放增加有关,而外源性CGRP可以模拟预处理的心肌保护作用。缺血预处理和外源性CGRP的作用可以被BIBN4096BS取消,为降钙素基因肽的心肌保护作用提供了足够的证据[34]。CGRP对心肌的作用似乎矛盾,但大多数实验支持CGRP有心肌保护作用,是否CGRP介导心肌保护作用需进一步的实验,以决定它是否能作为添加剂加入保存液。

    8  结语

    延长体外离体心脏的保存时间,不可避免地加长了缺血时间,再灌注损伤必然也会因此而加重,心肌所需的能量将会严重匮乏。进一步阐明缺血再灌注损伤的机制,减少I/R损伤;寻找有效的能量物质(如ATP-L),对提高心脏移植的成功率非常关键,保存液的研究也应在这方面取得突破。

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作者单位:710032 陕西西安,第四军医大学口腔医学系(Δ生理学教研室)

作者: 白军强,张权宇,裴建明 2008-7-4
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