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1 材料与方法
1.1 试剂 1640培养基购自GIBCO公司,加入56℃灭活的10%胎牛血清;SH-SY5Y细胞;银杏叶提取物EGb761;Aβ 25-35 (溶于双蒸水中,微孔滤膜过滤除菌,置37℃老化7天)、胰蛋白酶、噻唑蓝(MTT)购自Sigma公司;LDH试剂盒购于北京化学试剂公司;Caspase-3底物Ac-DEVD-AMC为PHARMINGEN公司产品。
1.2 EGb761对Aβ 25-35 损伤的保护作用 SY5Y细胞3×10 5 /ml接种于96孔板中,铺满后吸除原培养基,换上无血清的1640培养基,加入终浓度为1、10、100μg/ml的EGb761,1h后加入终浓度为50μM的Aβ 25-35 ,继续培养48h,测定细胞存活率;培养液上清液中LDH含量;细胞中Caspase-3活性。
1.3 MTT检测 损伤48h后,弃去培养液,每孔加入MTT液100μl,使终浓度0.5mg/ml,于37℃5%CO 2 继续培养4h,去上清,每孔加入100μl,振荡后于540nm处测定OD值 [6] 。
1.4 培养液中LDH含量的测定 吸出上述细胞培养液,每孔混匀后,取50μl与250μl乳酸盐缓冲基质混合,37℃水浴15min;然后加入5mg/ml辅酶I50μl,37℃水浴15min;加入0.2mg/ml2,4-二硝基苯肼250μl,于37℃水浴15min;再加入0.4mol/L NaOH2.5ml,于440nm处测定OD值(参照LDH试剂盒)。以空白培养基平行做空白对照,Lowry法定蛋白含量。
1.5 细胞中Caspase-3活性的测定 处理结束后,200×g室温离心5min,收集细胞,并用PBS洗一次,离心。沉淀中加入1ml细胞裂解液(Tris10mmol/L,NaH 2 PO 4 /Na 2 HPO 4 10mmol/L,NaCl130mmol/L,NaPPi10mmol/L,1%Triton X-100,pH7.5),冰浴30min。荧光测定专用96孔板中,每孔加入上述细胞裂解液20μl,caspase-3底物20μmol/L,以蛋白酶测定液(HEPES20mmol/L,DTT2mmol/L,10%glycerin,pH7.5)补足至终体积200μl。设试剂空白和正常细胞空白对照。混匀后,于激发波长380nm,发射波长430nm立即测定荧光值作为初始荧光值,37℃温育1h后再次测定荧光一次 [7] 。Lowry法定蛋白。
2 结果
实验结果表明,与Aβ 25-35 损伤组相比,10、100μg/ml EGb761分别使SH-SY5Y细胞存活率升高16.7%(P<0.05)和22.3%(P<0.01)(见Table1);10、100μg/ml EGb761分别使Aβ 25-35 损伤引起的LDH释放降低25.8%(P<0.05)和35.2%(P<0.01)(见Table2);低剂量和中剂量EGb761对Aβ 25-35 损伤引起的Caspase-3活性增高没有显著作用,100μg/ml EGb761组与Aβ 25-35 损伤组相比,Caspase-3活性增高12.1%(P<0.05)(见Table2)。
Table1 Effects of EGb761on viability decrease induced by Aβ 25-35 in SH-SY5Y cells.(略)
Data were expressed as the mean±SD,n=6. * P<0.05, ** P<0.01vs control; # P<0.05, ## P<0.01vs Aβ 25-35 group
Table2 Effects of EGb761on LDH release and the activity of Caspase-3in SH-SY5Y cells.(略)
Data were expressed as the mean±SD,n=6. * P<0.05, ** P<0.01vs control; # P<0.05, ## P<0.01vs Aβ 25-35 group.
3 讨论
本实验利用Aβ 25-35 损伤模型,用以寻找对Aβ 25-35 损伤有保护作用的药物。在本实验中,将毒性片段Aβ 25-35 于37℃温育7天,“老化”为具有神经毒性的聚集状态。老化的50μM Aβ 25-35 与SY5Y细胞共同孵育48h,可显著降低细胞存活率,增加细胞内LDH释放到细胞外,并使细胞内Caspase-3活性增高。因此我们可以推测Aβ通过破坏细胞膜,促进细胞调亡等机制引发细胞损伤,这些作用可能在AD的发病过程中起重要作用。
至今,关于Aβ诱导细胞死亡的途径还不清楚,Aβ引发AD有多种解释。然而,有一种假说认为Aβ的神经毒性是由自由基诱导产生的,推测由Aβ直接启动或由细胞间活性氧的增多间接启动 [8] 。Hardy [9] 等人提出“淀粉样变级联学说”,认为Aβ在脑内的沉积是引发AD的主要原因,Aβ能激活小胶质细胞释放炎症细胞因子,同时也直接诱发小胶质细胞产生呼吸暴发,生成大量的自由基,从而损害神经元。退变的神经元释放有毒物质,这些有毒物质又刺激其它胶质细胞释放神经毒因子和炎性因子,这样形成恶性循环,最终导致神经细胞的死亡。
实验结果表明,EGb761对Aβ 25-35 损伤引起的细胞存活率降低以及细胞膜破裂LDH释放增加有一定的保护作用;高浓度EGb761对Aβ 25-35损伤引起的细胞凋亡也有一定的保护作用。因此,我们推测EGb761对Aβ损伤有保护作用,对AD病的预防治疗可能会有一定的作用。通过进一步实验验证,其作用机理可能与它的抗氧化作用有关。EGb761对过氧化氢损伤有较好的保护作用,说明银杏叶提取物能有效清除体内自由基,提高机体抗氧化能力。银杏叶提取物主要含有黄酮甙、银杏苦内酯等有效成分。药理实验研究认为,银杏黄酮甙具有提高体内SOD活性和清除自由基的作用 [10] ,其作用机理可能为黄酮甙类化合物分子含有还原性羟基功能基团,可直接捕捉和清除自由基,发挥其抗氧化作用。
参考文献
1 孙久荣,刘文胜.银杏叶提取物对中枢神经系统的作用.中国药理学通报,1998,14(4):300-303.
2 Bilgihan A,Aricioglu A,Bligihan K,et al.The effect of EGb761on retinal lipid peroxidation and glutathione peroxidase level in experimen-tal lens induced uveitis.Int Opthalmol,1994,18(1):21-24.
3 Stoll S,Scheuer K,Poh IO,et al.Ginkgo biolba extract(EGb761)independently improves changes in passive avoidance learing and brain membrane fluidity in the aging mouse.Pharmacopsychiatry,1996,29(4):144-149.
4 Huang H,Ou H,Hsieh S.Antioxidants prevent amyloid peptide-in-duced apoptosis and alteration of calciumhomeostasis in cultured cortical neurons.Life Sci,2000,66:1879-1892.
5 Harris ME,Hensley K,Butterfield DA,et al.Direct evidence of ox-idative injury produced by the Alzheimer's beta-amyloid peptide(1-40)in cultured hippocampal neurons.Exp Neuron,1995,131:193-202.
6 Frances HC,Andrea B,Francisco JM,et al.PC12and Neuro2a cells have different susceptibilities to acetylcholinesterase-amyloid complex-es,amyloid 25-35 fragment,glutamate,and hydrogen peroxide.J Neu-rosci Res,1999,56:620-631.
7 Allen JW,Eldadah BA,Huang X,et al.Multiple caspases are in-volved inβ-amyloid-induced neuronal apoptosis.J Neurosci Res,2001,65:45-53.
8 Behl C,Davis JB,Lesley R,et al.Hydrogen peroxide mediates amyloid beta protein toxicity.Cell,1994,77:817-827.
9 Hardy JA,Higgins GA.Alzheimer's disease:the amyloid cascade hy-pothesis.Science,1992,256(5054):184-185.
10 杨义芳,吴国友.银杏叶药理研究.现代应用药学,1995,12(5):17.
* 基金项目:国家自然科学基金项目(编号:30171148)
作者单位:100050北京中国协和医科大学药物研究所