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高效液相色谱法测定甘草中甘草查尔酮A的含量

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摘要:【摘要】目的建立甘草中甘草查尔酮A的含量测定方法。方法采用高效液相色谱(HPLC)法,使用HypersilODS2色谱柱(4。结果甘草查尔酮A线性范围0。结论该方法灵敏、准确,重复性好,可作为甘草中甘草查尔酮A的含量测定方法。...

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  【摘要】目的建立甘草中甘草查尔酮A的含量测定方法。方法采用高效液相色谱(HPLC)法,使用Hypersil ODS2色谱柱(4.6 mm×250 mm, 5 μm),以甲醇-水-冰醋酸(60∶40∶1)为流动相,流速1.0 ml·min-1, 检测波长为372 nm,柱温 25℃。结果甘草查尔酮A线性范围0.2~1.0 μg, r=0.999 2;精密度实验RSD为1.51 %;重复性实验RSD为2.54 %;稳定性实验RSD为1.72 %;平均加样回收率98.76 %,RSD=1.94 %。结论该方法灵敏、准确,重复性好,可作为甘草中甘草查尔酮A的含量测定方法。

  【关键词】  甘草 甘草查尔酮A 高效液相色谱法

  Abstract:ObjectiveTo establish a determination method of licochalcone A in Licorice. MethodsUsing HPLC method, the system consisted of Hypersil ODS2 column (4.6 mm×250 mm, 5 μm),mobile phase of methanol-water- glacial acetic acid (60∶40∶1) mixture, with a flow rate of 1.0 ml·min-1; detection wavelength was at 372 nm column temperature of 25 ℃. ResultsLinear range was 0.1~1.0 μg with the r of 0.999 2,precision test ,repeation test ,and stability test were 1.51%,2.54% and 1.72%,respectively .The mean recovery was 98.76 %, with respectively RSD of 1.94 %. ConclusionThe methoed is sensitive, accurate and with good reproducibility and can be used as the determination method of licochalcone A.

  Key words:Licorice;   Licochalcone A;   HPLC

  药用甘草为豆科植物乌拉尔甘草Glycyrrhiza uralensis Fisch.,胀果甘草Glycyrrhiza inflata Bat.或光果甘草Glycyrrhiza glabra L.的干燥根及根茎,是多年生药用草本植物。植化研究表明甘草中存在大量的酚类成分,这些具有生物活性的成分有望成为开发新药的来源[1]。甘草查尔酮A(licochalcone A)是存在于甘草中的一种酚类查尔酮化合物[2],临床及药理研究表明,甘草查尔酮A具有抗氧化[3]、抗炎[4]、抗菌[5]、抗肿瘤[6]、抗利什曼原虫病[7]、免疫促进和雌激素样[8]等活性,在临床上具有广泛的应用前景,但有关其含量测定的方法还未见报道。本文建立了甘草查尔酮A的HPLC含量测定方法,为进一步开发甘草中这一重要活性成分提供简便可行的检测方法。

  1  仪器与试剂

  美国Agilent 1100液相色谱仪系统;KQ-100DB型数控超声波清洗器(昆山市超声仪器有限公司)。

  甘草由新疆昆仑神农有限公司赠送,经新疆甘草种植中心鉴定分别为乌拉尔甘草Glycyrrhiza uralensis Fisch.,胀果甘草Glycyrrhiza inflata Bat.和光果甘草Glycyrrhiza glabra L.。甘草查尔酮A对照品,本实验室自制,经质谱、碳谱和氢谱鉴定为甘草查尔酮A(licochalcone A), 归一化测定含量为98.81%。乙腈、甲醇为色谱纯;水为重蒸水;其他试剂均为分析纯。

  2   方法与结果

  2.1   溶液制备

  2.1.1   对照品溶液的制备准确称取在60℃干燥至恒重的甘草查尔酮A对照品适量,用流动相配成浓度为0.1 mg·ml-1的对照品储备液,待用。

  2.1.2   供试品溶液的制备准确称取干燥恒重甘草粉末(过60目筛)0.5 g,置100 ml具筛锥形瓶中,加入甲醇25 ml,超声处理(功率200 W,频率40 kHz)30 min,过滤,再加入甲醇20 ml,超声处理30 min,合并滤液,减压浓缩至干,加流动相溶解并定容至50 ml,微孔滤膜(0.45 μm)过滤,即得供试品溶液。

  2.2   色谱条件

  色谱柱为大连依利特 Hypersil ODS2 C18柱(4.6 mm×250 mm, 5 μm);柱温25℃;流动相为甲醇-水-冰醋酸(60∶40∶1);检测波长372 nm;流速1.0 ml·min-1。

  2.3   方法学考察

  2.3.1   线性关系考察

  准确吸取甘草查尔酮A对照品储备液2,4,6,8,10 ml分别置于5个10 ml容量瓶中,用流动相稀释至刻度。分别吸取上述对照品溶液各10 μl,依次注入液相色谱仪,按上述色谱条件测定峰面积,以浓度C(μg/ml)为横坐标,色谱峰面积A为纵坐标,绘制标准曲线,得回归方程为:A=41 308 C-142 057,r=0.999 2, 线性范围为:0.2~1.0 μg。

  2.3.2   精密度实验

  准确吸取浓度为100 μg·ml-1的甘草查尔酮A标准品溶液10 μl,重复进样5次,测得峰面积值,计算相对标准偏差RSD为1.51%,说明仪器良好。

  2.3.3   重复性实验

  准确称取同一批次的胀果甘草5份,按“2.1.2”项下制备样品溶液,依次测定,根据标准曲线换算甘草查尔酮A的含量,计算甘草查尔酮A含量的RSD为2.54%,表明实验方法重复性较好。

  2.3.4   稳定性实验

  取同一份待测供试品溶液,在0, 2, 4, 8, 12 h进样测定,测得甘草查尔酮A峰面积值并计算样品峰面积的RSD为1.72%,表明供试品溶液于12 h内稳定。

  2.3.5   加样回收率实验

  准确称取已知含量的样品约0.1 g(共5份),精密加入0.10 mg/ml的甘草查尔酮A标准品1 ml,按“2.1.2”项下方法制备所需溶液,测定并计算含量。表1结果表明甘草查尔酮A平均回收率为98.76 %,RSD为1.94 %。表1  样品加样回收率实验结果(略)

  2.4   样品测定

  按照本方法的测定条件,分别测定《中国药典》收录的3种甘草样品,计算甘草查尔酮A的含量,结果见表2。甘草查尔酮A标准品及样品HPLC图谱见图1~2。表2  甘草查尔酮A含量测定结果(略)

  3  讨论

  3.1   色谱条件选择

  比较了乙腈-水(60∶40)、甲醇-水(70∶30)、甲醇-水-冰醋酸(60∶40∶1)、乙腈-甲醇-水(40∶30∶30)等流动相体系,结果第3种流动相分离效果最好,所以,本文选用甲醇-水-冰醋酸(60∶40∶1)为流动相。

  3.2   溶液制备方法

  比较了不同提取溶剂(甲醇,乙醇,丙酮)和提取方法(回流提取,索氏提取,超声提取)的提取效果,结果表明甲醇对甘草查尔酮A的提取效果优于其他两种溶剂,索氏提取和超声提取的效果相当,均优于回流提取,但索氏提取耗时较长,故本文以甲醇为提取剂采用超声提取制备样品供试溶液。

  3.3   检测波长的选择在200~700 nm之间对甘草查尔酮A对照品溶液进行光谱扫描,结果表明在372 nm处有极大吸收,故选择372 nm为检测波长。

  结果表明该方法简单,快捷,专属性强,准确度高,具有良好的重复性,可用于甘草中甘草查尔酮A的含量测定。

  【参考文献】
  [1]Shibata S. A drug over the millennia: pharmacognosy, chemistry, and pharmacology of licorice[J]. Yakugaku Zasshi, 2000, 120(10): 849.

  [2]Wang QE, Lee SC, Wang XR. Isolation and purification of inflacoumarin A and licochalcone A from licorice by high-speed counter-current chromatography[J]. J Chromatogr A. 2004, 1048(1): 51.

  [3]Haraguchi H, Ishikawa H, Mizutani K, et al. Antioxidative and superoxide scavenging activities of retrochalcones in Glycyrrhiza inflata[J]. Bioorg Med Chem, 1998, 6(3): 339.

  [4]Cui YM, Ao MZ, Li W, et al. Anti-inflammatory activity of licochalcone A isolated from Glycyrrhiza inflata [J]. Z Naturforsch, 2008, 63c: 361.

  [5]Haraguchi H, Tanimoto K, Tamura Y, et al. Mode of antibacterial action of retrochalcones from Glycyrrhiza inflata [J]. Phytochemistry, 1998, 48(1): 125.

  [6]Iwata S, Nishino T, Inoue H, et al. Antitumorigenic activities of chalcones (II). Photo-isomerization of chalcones and the correlation with their biological activities[J]. Biol Pharm Bull, 1997, 20(12): 1266.

  [7]Chen M, Zhai L, Christensen SB, et al. Inhibition of fumarate reductase in Leishmania major and L. donovani by chalcones [J]. Antimicrob Agents Chemother, 2001, 45(7): 2023.

  [8]Rafi MM, Rosen RT, Vassil A, et al. Modulation of bcl-2 and cytotoxicity by licochalcone-A, a novel estrogenic flavonoid[J]. Anticancer Res, 2000, 20(4): 2653.

 

作者: 2010-9-22
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