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枸杞子中免疫活性成分的分离、纯化及物理化学性质的研究

来源:中国色谱网
摘要:摘要从宁夏枸杞子提取得到的糖缀合物LBP经DEAE-cellulose柱色谱得到5个组分,其中Lbp3,Lbp4和Lbp5分别经CM-SephadexC-50,SephadexG-100,SephadexG-50柱色谱得到均一组分LbGp3,LbGp4和LbGp5。关键词枸杞子。多糖枸杞子(LyciumbararumL。近年来证实枸杞子的粗多糖-蛋白复合物为其有效成分之一。...

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摘要 从宁夏枸杞子提取得到的糖缀合物LBP经DEAE-cellulose柱色谱得到5个组分,其中Lbp3, Lbp4和Lbp5分别经CM-Sephadex C-50, Sephadex G-100, Sephadex G-50柱色谱得到均一组分LbGp3, LbGp4和LbGp5。N含量: LbGp3 0.83%, LbGp4 1.72%, LbGp5 9.58%。总糖含量: LbGp3 93.6%, LbGp4 85.6%, LbGp5 8.6%。分子量: LbGp3 9.25×104, LbGp4 21.48×104, LbGp5 2.37×104。糖组成为: LbGp3: Ara∶Glc=1∶1, LbGp4: Ara∶Gal∶Rha∶Glc=1.5∶2.5∶0.43∶0.23,LbGp5: Rha∶Ara∶Xyl∶Gal∶Man∶Glc=0.33∶0.52∶0.42∶0.94∶0.85∶1。初步分析表明LbGp4是O-连接的糖蛋白。
关键词 枸杞子; 糖缀合物; 多糖

  枸杞子(Lycium bararum L.)是我国一种传统中药,有“补肾益精,养肝明目”的功效,民间多用来作为延年益寿的补品。近年来证实枸杞子的粗多糖-蛋白复合物为其有效成分之一。但目前这方面的工作主要偏重于药理作用的探讨[1~3],化学工作,如组分的纯化,结构研究等报道很少。田庚元等[4,5]曾从宁夏枸杞子中得到1个有免疫活性的糖蛋白LbGp。我们对枸杞子中的免疫活性成分进行较系统的研究,分离得到Lbp1~LbP5 5个组份,并对其进行小鼠体内免疫活性试验,发现这5个组份均可提高腹腔巨噬细胞吞噬百分率及体内淋巴细胞转化率。其中对Lbp3, Lbp4和Lbp5分别进行纯化,得到LbGp3, LbGp4和LbGp5,并对这些糖缀合物进行物理化学性质的研究。

材料和方法

  材料与仪器 722型,754型分光光度计为上海第三分析仪器厂产品,红外光谱为Bio-Rad FTS185,气相色谱仪为Varian VISTA6000,液相色谱仪为Shimadzu 10AD, 电泳仪为Bio-Rad
  的Mini-ProteanR II Electrophoresis cell, 毛细管电泳仪为Water Quanta 4000E,紫外吸收测定仪为Perkin Elmer。
  标准蛋白分子量与DEAE-cellulose为Sigma产品, Sepharose 4B, CM-Sephadex C-50, Sephadex G-100和Sephadex G-50为Pharmacia产品。标准葡聚糖分子量为Fluka试剂。其余试剂为国产分析纯。
  枸杞子为宁夏产品。
  糖缀合物的分离、纯化 生药枸杞子500 g粉碎后,在室温下用3倍体积H2O浸泡24 h,双层纱布过滤,残渣再次用1.5倍体积H2O浸泡6 h,合并滤液。旋转蒸发浓缩(T<40℃)。离心,上清液用4倍体积无水EtOH沉淀。沉淀经少量水溶解后,用1/5体积Savage试剂(CHCl3—n-BuOH 4∶1)去游离蛋白(7次)。对水透析2 d,冷冻干燥,得粗多糖缀合物LBP 4.0 g。
  LBP进行DEAE-cellulose柱色谱(HCO-13型),依次用H2O,0.05,0.1,0.25,0.5 mol*L-1 NaHCO3洗脱,隔管检测A280和A490(硫酸—苯酚法),分离得到Lbp1, Lbp2, Lbp3, Lbp4和Lbp5 5个组分(图1)。除Lbp2因量少还未研究外,Lbp1透析脱盐后,经Sephadex G-100纯化得LbGp[1,2]。Lbp3分别经Sephadex G-100(0.1 mol*L-1 NaCl洗脱)和CM-Sephadex C-50(0.2 mol*L-1磷酸缓冲液洗脱)柱色谱得LbGp3,得率为32.5%。 Lbp4经2次Sephdex G-100(0.1 mol*L-1 NaCl洗脱)柱色谱得LbGp4,得率为40.2%。Lbp5经Sephdex G-100(0.1 mol*L-1 NaCl洗脱)和Sephdex G-50(0.1 mol*L-1 NaCl洗脱)柱色谱得LbGp5,得率为20.1%。
 
Fig 1 Elution pattern of Lbp on DEAE-cellulose column(2 cm×40 cm). Eluent: H2O, 0.05~0.50 mol*L-1 NaHCO3; Flow rate: 0.5 ml*min-1. 

  纯度鉴定 HPLC法: 分析柱为TSK-2000SW,洗脱液为NaH2PO4-Na2HPO4缓冲液(50 mmol*L-1, pH 7.0), 流速1.0 ml*min-1。 紫外检测波长为254 nm。 毛细管电泳法: 电泳液为100 mmol*L-1 H3BO3-KOH缓冲液(pH 10)。紫外检测波长254 nm。SDS-PAGE电泳法[6]: 用1.5 mol*L-1 Tris-HCl(pH 8.8)缓冲液,分离胶浓度15%,考马斯亮蓝R-250染色。
  糖组成分析 纸色谱: 样品加1 mol*L-1 H2SO4 2 ml,充N2,封管,100℃水解4 h后用BaCO3中和进行纸色谱。展开剂为n-BuOH—C5H5N—H2O(6∶4∶2),显色剂为苯胺-邻苯二甲酸。HPLC法: 纸色谱证实已水解完全后,作HPLC分析。分析柱为Carbohydrate analysis,流动相为乙腈—水(85∶15),流速1.0 ml*min-1,示差检测。气相色谱法: 将完全酸水解样品,按文献[7]方法制成相应的糖醇乙酸酯衍生物,用少量氯仿溶解后进行气相色谱分析,分析柱3%OV-225毛细管柱(25 m×0.3 mm),程序升温180℃(5 min)200℃(30 min)。
  分子量测定 LbGp3和LbGp4的分子量测定: 采用凝胶过滤法测定分子量。Sepharose 4B柱(2 cm×50 cm)用0.1 mol*L-1 KCl按恒定流速(10 ml*h-1)平衡24 h。将分子量分别为25000, 80000, 270000, 670000的Dextran标准品相继上柱(每管收集4.4 ml),苯酚-硫酸法测定洗脱峰,测得洗脱体积Ve。用蓝色葡聚糖(分子量200万)求得外水体积Vo。用线性回归法得出回归方程y=-2.5903+3.1021(γ=-0.9977)。按同样条件对待测样品进行柱色谱,由回归方程求得其分子量。LbGp5的分子量测定: 用SDS-PAGE电泳法测定其分子量(条件同SDS-PAGE电泳法)。以牛血清白蛋白、鸡白蛋白、胰凝乳蛋白酶原、β-乳球蛋白和溶菌酶作分子量标准。溴酚兰为指示剂,定其迁移率为1.0,以各蛋白质相对迁移率对分子量对数作出标准曲线,根据样品的相对迁移率可求得其分子量。
  LbGp4糖肽键特征[8] 先将样品置0.1 mol*L-1 NaOH—1.0 mol*L-1 NaBH4溶液中,40℃~45℃反应24 h,然后取样品作薄层色谱。茚三酮显色。
  糖含量测定[9] 用硫酸-苯酚法显色,分别以LbGp3, LbGp4和LbGp5中摩尔比相同的混合单糖作标准,在486 nm处测定。根据它们的标准系列回归方程求出样品中总糖的含量。
  UV和IR分析 样品溶于水,浓度1.0 mg*ml-1,于200 nm至600 nm之间进行紫外扫描。测红外光谱时,样品用KBr压片。

结果

  LbGp3和LbGp4为白色絮状固体,LbGp5为灰白色固体。LbGp3,LbGp4在紫外200 nm处左右有强吸收,而在280 nm处吸收很弱。LbGp5在200 nm和280 nm处紫外均有较强吸收。红外光谱分析,LbGp3的吸收谱带:1648 cm-1(酰胺键特征吸收,弱),1075 cm-1(糖环特征吸收,强)。 LbGp4的吸收谱带:1645 cm-1(中),1098 cm-1(强)。LbGp5的吸收谱带: 1651 cm-1(强),1098 cm-1(弱)。N元素分析结果: LbGp3为0.83%,LbGp4为1.72%,LbGp5为9.58%。
  LbGp3和LbGp4经毛细管电泳和HPLC(图2,3)分析得到单一对称峰,表明其为均一性。LbGp5经HPLC和SDS-PAGE电泳分析亦表明其有均一性(图4),SDS-PAGE电泳测得其分子量为2.37×104(图5)。凝胶过滤法测得LbGp3和LbGp4的分子量分别为9.25×104, 21.48×104。
 



Fig 2 Elution of LbGp3 on CZE.Voltage: 20 V, UV 254 nm; Eluent: 100 mmol*L-1 H3BO3-KOH, pH 7.0.
 



Fig 3 Elution of LbGp4 on TSK 2000SW. Flow rate: 1.0 ml*min-1; Detection: RI; Elution: 50 mmol*L-1 NaH2PO4-Na2HPO4, pH 7.0. 

  纸色谱和非衍生化的HPLC分析表明LbGp3含有Ara和Gal,LbGp4含有Ara, Gal和微量的Glc,LbGp5用此法未检测到单糖。
  糖醇乙酸酯衍生化气相色谱(图6)表明LbGp3含有Ara, Gal,摩尔比为1∶1,LbGp4含有Ara,Gal,Rha和Glc,其摩尔比为1.5∶2.5∶0.43∶0.23。LbGp5含有Rha,Ara,Xyl,Gal,Man和Glc,其摩尔比为0.33∶0.52∶0.42∶0.94∶0.85∶1。
  LbGp4经β-消除,薄层色谱结果显示其糖链与肽链是以O-糖苷键连接的。
  总糖含量测定结果表明LbGp3为93.6%, LbGp4为85.6%,LbGp5为8.6%。
 

 

Fig 4 Photograph of LbGp5 on SDS-PAGE. Line 1. Albumin, bovine(66000) Line 2. Albumin, egg(45000) Line 3. Trypsingen(24000) Line 4. β-Lactoglobin(18400) Line 5. Lysozyme(14300) Line 6. LbGp5.
 

 

Fig 5 Plot of migration rates(MR) of standard protein samples and LbGp5 on SDS-PAGE against their lgMW. Line 1. ALbumin, bovine(66000) Line 2. Albumin, egg(45000) Line 3. Trypsingen(24000) Line 4. β-lactoglobin(18400) Line 5. Lysozyme(14300). 

 

Fig 6 GLC of alditol acetate derivatives of carbohydrates on 3% OV-225 column(0.3 mm×25 m). Temp: 180℃(5 min)200℃(30 min) A. Standard sampe: 1. Rha; 2. Ara; 3. Xyl; 4. Man; 5. Gal; 6. Glc. 

B. Hydrolyzate of LbGp3.

讨论

  试验结果表明,枸杞子中具免疫活性的有效成分是一类结构复杂的糖缀合物。除LbGp5外,都是一些高糖含量的糖蛋白,其中LbGp3的糖含量高达93.6%,这在植物糖蛋白中是极为罕见的。
  我们[1]原有的提取分离路线中分别用乙醚和丙酮脱脂和去色素。在试验过程中发现回收溶剂后所得脂类和色素残渣很少,因此省去脱脂、去色素及溶剂回收步骤,并不影响样品纯度,且粗多糖的提取率由0.4%提高到0.8%。
  用非衍生化的HPLC和纸色谱对LbGp5进行糖组成分析均未检测到单糖,而用糖醇乙酰化的气相色谱对其进行分析,发现有少量Rha,Ara,Xyl,Gal,Man和Glc。
  硫酸-苯酚法测糖含量时,发现用与样品中摩尔比相同的混合单糖溶液作标准是必要的,否则糖含量的测定将出现较大的差异。
  此外,Lbp1,Lbp2,Lbp3,Lbp4和Lbp5均有明显的细胞免疫活性,纯化后的LbGp3,LbGp4和LbGp5的活性测定工作正在进行中。

作者: 黄琳娟,林颖,田庚元,计国帧 2007-5-18
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