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重组人粒细胞集落刺激因子肽谱分析方法初探

来源:中国仪器仪表资讯网
摘要:摘要:目的:建立检测重组人粒细胞集落刺激因子(rhG-CSF)肽谱的方法。方法:采用RP-HPLC法及CZE法。2种分析方法均具有灵敏度高,重现性好等优点。关键词重组人粒细胞集落刺激因子反相高效液相色谱毛细管区带电泳肽谱肽谱是检测基因工程药物质量的重要指标之一,对每一种蛋白来说,肽谱是特征的、专一的。...

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摘要:目的:建立检测重组人粒细胞集落刺激因子(rhG-CSF)肽谱的方法。方法:采用RP-HPLC法及CZE法。结果:检测rhG-CSF经胰蛋白酶裂解后的肽段,发现九源公司生产的各批产品的一级结构具有一致性。2种分析方法均具有灵敏度高,重现性好等优点。结论:本法适用于基因工程药物的肽谱分析。
关键词 重组人粒细胞集落刺激因子 反相高效液相色谱 毛细管区带电泳 肽谱
  肽谱是检测基因工程药物质量的重要指标之一,对每一种蛋白来说,肽谱是特征的、专一的。通过肽谱分析,可以鉴别不同批次的产品其一级结构的一致性。目前分析肽谱的常用方法为溴化氰裂解甲硫氨酸位点[1,2],再利用SDS-PAGE方法分离降解的片段,但此法适用于溴化氰裂解的较大肽段的分析,小片段常易丢失。而反相高效液相色谱(RP-HPLC)法[3]是根据肽段疏水性大小来分离。毛细管区带电泳(CZE)法[4]是根据溶质荷质比不同进行分离,2种方法均可分离分子量较小的肽段。本文采用N-甲苯磺酰基-L-苯基丙氨酸氯甲基酮(N-Tosyl-L-Phenylalanine Chloromethyl Ketone, TPCK)处理的胰蛋白酶裂解rhG-CSF,再用RP-HPLC法或CZE法分析裂解片段,获得满意结果。
1 仪器、试剂及样品
  Beckman HPLC系统,包括125型泵,168型二级管阵列检测器,System Gold数据处理软件;Beckman P/ACE 5000型毛细管电泳仪。
  色谱柱:Vydac C18(4.6 mm×150 mm),5 μm;毛细管柱:Beckman Uncoated, 37 cm×75 μm。
  TPCK处理的胰蛋白酶为Boehringer公司产品,序列级;三氟醋酸为Sigma公司产品;乙腈为Fisher公司产品;碳酸氢铵、磷酸氢二钠、磷酸二氢钠、硼砂、硼酸均为国产分析纯。
  重组人粒细胞集落刺激因子样品来自九源公司。
2 胰蛋白酶酶切方法
  取浓度为1 mg。mL-1的rhG-CSF样品对0.1 mol。L-1碳酸氢铵透析过夜,以1∶50(w/w)加入TPCK处理的胰蛋白酶,37 ℃酶切20 h,放入-20 ℃冰箱备用,进样前离心去除不溶物。
3 RP-HPLC分析方法
  色谱条件:流速0.5 mL。min-1,检测波长214 nm,进样量50 μL,梯度洗脱程序见表1[流动相A:0.1%(w/v)三氟醋酸,流动相B:乙腈-水(9∶1)溶液,内含0.1%(w/v)三氟醋酸]。

表1 梯度洗脱程序

时间/min

各流动相比例/%

A

B

0

95

5

40

15

85

42

95

5

60

95

5

4 RP-HPLC法肽谱结果分析
  rhG-CSF含有175个氨基酸,分子量约为18 000,其分子中含有5个Arg,分别位于第23,147,148,167,170位上,4个Lys,分别位于第17,24,35,41位上。rhG-CSF用胰蛋白酶裂解,理论上有9个裂解位点和8个肽段以及2种单氨基酸。但酶解常不完善或在非Arg, Lys残基上切断,因此会产生更多的分离峰。实验用3批rhG-CSF样品经胰蛋白酶裂解后肽段用RP-HPLC分析,各批间肽图一致(980203号样品肽谱见图1略)。用此方法重复5次,结果完全一致。计算得同一样品中8个主要肽段同一样品中8个主要肽段同一天内出峰时间的RSD均小于1%(表2)。

表2 RP-HPLC肽谱中8个主要肽段出峰时间及日内RSD

肽段

出峰时间/min

日内RSD/%

T1

9.734

9.681

9.842

0.8

T2

11.934

11.948

11.943

0.1

T3

12.449

12.475

12.435

0.2

T4

12.847

12.872

12.880

0.1

T5

14.907

14.899

14.917

0.1

T6

20.608

20.559

20.527

0.2

T7

22.064

22.046

21.921

0.4

T8

22.909

22.897

22.715

0.5

5.1 缓冲液pH的影响 考察不同pH的0.05 mol。L-1磷酸缓冲液,在电压12 kV,柱温23 ℃,检测波长214 nm等条件不变情况下对rhG-CSF酶切后肽段的分离情况。缓冲液pH 5.8以下,肽段基本上达到基线分离,而且基线相对稳定,但pH 2.5时肽段分离时间比pH 5.8时长1倍。缓冲液pH大于6以上,分离效果均下降(图2)略。实验中选择缓冲液pH 5.8。
5.2 磷酸缓冲液浓度的影响 实验表明硼酸-氢氧化钠体系分离效果均不如磷酸缓冲液,并随着磷酸缓冲液浓度增大,分离效果更好(图3)略,但由于增大缓冲液浓度,电流增大,热效应增加,基线不稳5.3 操作电压的选择 在其它实验条件不变情况下,改变操作电压为5,8,12,15,20 kV,8个主要肽段的迁移时间随电压的增加而减小。在8 kV至20 kV之间,电压对肽段的分离基本上没有影响(图4)。但随着电压的增加,电流增大,热效应增加,实验中选择电压为12 kV。
5.4 样品盐浓度和进样体积的影响 实验表明,0.1 mol。L-1碳酸氢铵不会影响分离,样品无需处理即可分析。进样量若大于5 s,分离效果下降,有若干峰分不开。实验中选择压力进样2 s。
,易产生小的气泡尖峰,影响分离。实验中选择缓冲液浓度为0.05 mol。L-1。

6 CZE的分析方法
  毛细管柱:37 cm×75 μm,有效长度30 cm;检测波长214 nm;分离电压12 kV;分离时间12 min;柱温23 ℃;压力进样2 s;缓冲液为0.05 mol。L-1磷酸盐缓冲液,pH 5.8;每次运行之前用1 mol。L-1盐酸、0.1 mol。L-1氢氧化钠、蒸馏水、缓冲液分别依次冲洗毛细管各3 min。
7 CZE肽谱的分析结果
  3批rhG-CSF样品经胰蛋白酶酶切后肽段CZE分析,可得批间一致(980203号样品肽谱见图5)。同一酶切后的样品重复进样,考察了8个肽段出峰时间的日内RSD,均小于0.1%(表3)。
表3 CZE肽谱中8个主要肽段出峰时间及日内RSD

肽段

出峰时间/min

日内RSD/%

T1

4.469

4.470

4.467

0.03

T7

5.371

5.378

5.379

0.08

T8

5.545

5.550

5.552

0.06

T2

5.876

5.874

5.867

0.08

T4

6.362

6.365

6.355

0.08

T6

6.796

6.801

6.799

0.04

T3

7.285

7.279

7.291

0.08

T5

9.085

9.086

9.099

0.09

8 RP-HPLC肽谱与CZE肽谱比较
  将RP-HPLC肽谱中8个肽段分别收集,冻干过夜,用蒸馏水溶解后做CZE分析,所出的峰分别与CZE肽谱

表4 出峰时间比较(min)

峰号

HPLC

CZE

T1

9.7

4.5

T2

11.9

5.9

T3

12.4

7.3

T4

12.8

6.4

T5

14.9

9.1

T6

20.5

6.8

T7

21.9

5.4

T8

22.8

5.6

9 讨论
  本文建立了胰蛋白酶裂解rhG-CSF后,用RP-HPLC法或CZE法分离检测肽段的方法。方法高度专一,具有重复性好,灵敏度高等特点。RP-HPLC肽谱中各肽段理论塔板数分别为12 173,12 639,13 750,14 646,16 135,15 745,29 926,38 383,缺点是主要肽段需在30 min全部出现,且多余未消化的胰蛋白酶在45 min左右出峰,这样整个肽谱分析过程时间需60 min。而CZE法则克服了传统电泳散热效率不高的缺点,全面改善分离质量。CZE法肽谱中各肽段理论塔板数分别为21 711, 22 754, 41 025, 38 922, 21 478, 26 589, 35 471, 38 752,分析只需ng级的样品,分析时间只需12 min,加上盐酸、氢氧化钠等清洗毛细管,整个肽谱分析过程只需24 min,非常适用于rhG-CSF的肽谱分析。九源公司生产的3批rhG-CSF经RP-HPLC和CZE 2种方法分析,批间均达到一致。推测本法也适用于其它基因工程蛋白质的肽谱分析。

参考文献
1,Vera Nikodem, Jacques R Fresco. Protein fingerprinting by SDS-gel electrophoesis after partial fragmrntation with CNBr. Anal Biochem, 1979, 97: 382
2,饶春明,赵燕平,张向明等.银染SDS-PAGE微量肽图法的改进.生物化学与生物物理进展.1989,16(3):241
3,Kelly A, Milos Novotny. High-sensitivity peptide mapping by capillary zone electrophoresis and microcolumn liquid chromatography, using immobilized trypsin for protein digestion. Anal Chem, 1989, 61: 2226
4,McCormick R M. Capillary zone electrophoretic separation of peptides and proteins using low pH buffers in modified silica capillaries. Anal Chem, 1988, 60:2322

作者: 未知 2008-3-21
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