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小鼠MAdCAM-1分子剪切体的克隆及表达

来源:中华微生物学和免疫学杂志
摘要:小鼠MAdCAM-1分子剪切体的克隆及表达中华微生物学和免疫学杂志2000年第4期第20卷基础免疫学作者:张慧英高杰英罗振革刘永全彭虹陈志华孔祥英单位:军事医学科学院微生物流行病研究所关键词:粘膜血管定居因子。蛋白表达【摘要】目的获得小鼠粘膜血管定居因子(MAdCAM-1)分子剪切体cDNA,并在原核......

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小鼠MAdCAM-1分子剪切体的克隆及表达

中华微生物学和免疫学杂志 2000年第4期第20卷 基础免疫学

作者:张慧英 高杰英 罗振革 刘永全 彭虹 陈志华 孔祥英

单位:军事医学科学院微生物流行病研究所

关键词:粘膜血管定居因子;蛋白表达

  【 摘要 】 目的 获得小鼠粘膜血管定居因子(MAdCAM-1)分子剪切体cDNA,并在原核细胞中进行有效表达。方法  从BALB/c小鼠的肠系膜淋巴结中提取总RNA,利用RT-PCR方法获得小鼠MAdCAM-1分子剪切体cDNA,构建原核表达载体并进行表达,纯化融合蛋白制备多抗。 结果 核酸序列分析表明获得了正确的小鼠MAdCAM-1分子剪切体cDNA;小鼠MAdCAM-1剪切体以融合蛋白的形式得到表达,主要以包涵体形式存在;免疫印迹分析表明,小鼠MAdCAM-1剪切体蛋白可被小鼠MAdCAM-1分子的标准单抗及自制多抗识别。 结论  小鼠MAdCAM-1剪切体cDNA、表达蛋白及多抗的获得,为进一步研究该分子的生物学活性做好准备。

Cloning and protein expression of mouse MAdCAM-1 spliced variant

ZHANG Huiying, GAO Jieying, LUO Zhen′ge

  (Institute of Microbiology and Epidemiology, Beijing 100850, P.R.China)

  【 Abstract 】 Objective To obtain the spliced mouse mucosal addressin cell adhesion molecule-1 (mMAdCAM-1) cDNA and express it in E.coli. Methods Obtaining the spliced mMAdCAM-1 cDNA from mesenteric lymph nodes of BALB/c mice by RT-PCR, cloning the cDNA into the procaryotic expressive vector pGEX-2T and expressing the fusion protein. Results After identified by DNA sequencing, the fusion protein was expressed and mainly existed as inclusion bodies. After purification, we prepared the multi clonal-antibody to the fusion protein. The spliced mMAdCAM-1 protein was identified by the multi clonal-antibody and standard monoclonal antibody against mMAdCAM-1 with Western blot. Conclusion The spliced mMAdCAM-1 cDNA, expressed protein and multi clonal-antibody can support the further research about the biological activities of mMAdCAM-1.

  【 Subject words 】 Mouse mucosal addressin cell adhesion molecule-1 (mMAdCAM-1); Protein expression

  mMAdCAM-1分子(mucosal addressin cell adhesion molecule-1)也称粘膜血管定居因子,是粘附分子免疫球蛋白超家族中的一员。它主要表达于肠道相关淋巴组织和固有层血管内皮细胞上,它同淋巴细胞上的归巢(homing)受体分子整合素α4β7及选择素L-selectin结合,介导淋巴细胞向粘膜部位的定向归巢。另外,该分子还参与某些部位的炎症过程〔1-3〕。完整的mMAdCAM-1分子由信号肽、胞外区、跨膜区和胞内区四部分组成,胞外区由3个Ig样结构域和一个糖基化的mucin-样区域构成,N-端的两个Ig样结构域与受体α4β7结合时起重要作用,mucin-样区域是与L-selectin发生作用的部位。mMAdCAM-1剪切体是缺失第四个外显子形成的,缺失mucin-样区域和近膜Ig样结构域,不能与L-selectin结合,但仍保持着与整合素α4β7分子结合的特性〔4〕。mMAdCAM-1分子剪切体变短并丧失了与L-selectin结合的能力,将影响其与淋巴细胞间的结合,目前认为其功能可能在于调节mMAdCAM-1分子与淋巴细胞的相互作用。

  本文研究获得了mMAdCAM-1分子剪切体cDNA,并将其在原核细胞中进行表达,制备相应抗体,为今后深入研究mMAdCAM-1分子剪切体生物学功能提供便利条件。

  材料与方法

  质粒与菌株、动物: 菌株JM109、JM101、DH5α、HB101、XL-1Blue、BL-21为本室保存;质粒pGEX-2T由本室保存。BALB/c小鼠6~8周龄,大耳白兔由本院动物中心提供。

  主要试剂:pGEM-T载体质粒、质粒提取试剂盒、AMV逆转录酶及Taq DNA聚合酶为Promega公司及上海生工公司产品,T4 DNA连接酶及限制性内切酶等购于华美生物工程公司、天象人生物工程公司等;DNA快速回收纯化试剂盒购于原平生物工程公司;谷胱甘肽-Sepharose 4B亲和层析介质购于Pharmacia公司;大鼠抗小鼠MAdCAM-1分子单抗MECA-367,购于Pharmingen公司;生物素标记的羊抗大鼠IgG、羊抗兔IgG及蛋白marker,亲和素标记HRP均由本室制备。

  引物设计及目的片段的钓取:根据文献报道的mMAdCAM-1核酸序列设计引物〔5,6〕,两端加有BamHⅠ酶切点,下游引物终止密码子由TGA改为大肠杆菌偏性密码子TAA,能扩增出编码成熟mMAdCAM-1分子剪切体多肽的cDNA序列。上游引物:5′CCGGATCCGGACAGTCCTTCCAGGTG 3′; 下游引物:5′AGGATCCTTATAGGTGTGTACATGAGCT 3′利用异硫氰酸胍一步法〔7〕从BALB/c小鼠的肠系膜淋巴结(MLN)中提取总RNA,通过RT-PCR反应获得目的基因片段。

  DNA片段的回收、纯化,质粒的转化、提取和纯化、连接反应:见参考文献〔8〕及相关产品说明书。DNA序列测定由赛百盛公司完成。

  原核表达载体的构建:将扩增得到的mMAdCAM-1分子剪切体的cDNA片段克隆于pGEM-T中,经DNA测序分析正确后,利用BamHⅠ位点将cDNA片段切下,连入pGEX-2T载体的相应位点,获得重组表达载体pGEX-2T-SM。

  融合蛋白的诱导表达及纯化:表达菌过夜活化后按1%接种量进行培养,37℃,2~4h;IPTG诱导2~4h。超声破碎菌体,收集上清和沉淀。①亲和层析法纯化:利用亲和层析介质谷胱甘肽-Sepharose 4B进行纯化,方法见说明书。②包涵体初步纯化:菌体沉淀分别用含2% Triton-X-100的2mol/L脲、4mol/L脲洗涤2次后,溶于8mol/L脲中,加入1mmol/L DTT,室温放置1.5h,12000×g离心20min,保存上清。用9倍体积的50mmol/L KH2PO4(pH10.7)、1mmol/L EDTA(pH8.0)、50mmol/L NaCl溶液稀释上清,室温放置半小时,并加KOH维持溶液,pH值为10.7。用HCl将溶液的pH值调至8.0,室温放置半小时后,12000×g离心15min,用50mmol/L Tris-HCl(pH8.0)的缓冲液透析上清过夜。测定蛋白浓度,分装后于-20℃保存。

  凝血酶酶切反应:125mmol/L NaCl、2.5mmol/L CaCl2、50mmol/L Tris-HCl(pH8.0)缓冲液中进行酶切反应,融合蛋白与凝血酶的蛋白比例分别为1005,1003,1002,1001,25℃反应2h。

  mMAdCAM-1剪切体融合蛋白的多抗制备:按常规方法进行,每只家兔融合蛋白的用量为0.2mg蛋白/次。

  免疫印迹分析:对蛋白进行SDS-PAGE后,按常规方法将蛋白质转移到硝酸纤维素膜上,分别用自制抗mMAdCAM-1兔血清 及mMAdCAM-1标准单抗MECA-367反应,生物素标记羊抗兔及羊抗大鼠IgG作为二抗进行检测,亲和素标记的HRP进行DAB显色。

  结果

  1. mMAdCAM-1分子剪切体cDNA的获得:利用合成引物对小鼠MLN总RNA进行RT-PCR扩增反应, 扩增产物经凝胶电泳分析表明:扩增片段大小约为0.7kb,与缺失信号肽的mMAdCAM-1分子剪切体cDNA大小相当。

  2.原核重组表达载体的构建:将RT-PCR获得的扩增片段与载体pGEM-T连接,经核酸序列分析表明与文献报道的mMAdCAM-1分子剪切体cDNA序列完全一致。利用BamHⅠ将cDNA片段从重组质粒pGEM-SM2中切下,与表达载体pGEM-2T连接,经酶切鉴定筛选出正向连接重组表达质粒pGEM-2T-SM。

  3. mMAdCAM-1剪切体蛋白的表达:分别对含质粒pGEX-2T的载体菌和质粒pGEX-2T-SM的重组菌进行 IPTG诱导表达。结果表明载体菌在相对分子量(Mr)为26×103处有高表达蛋白,其大小与载体蛋白GST完全一致,是诱导表达的载体蛋白,在上清和沉淀中都存在;而重组菌在Mr约为59×103处有新的蛋白产生,其大小与推测的mMAdCAM-1剪切体融合蛋白Mr相一致,薄层扫描显示该蛋白占菌体蛋白的44.3%,其主要以包涵体形式存在于沉淀中,上清液中诱导表达的融合蛋白含量很低(见图1)。

  图1 SDS-PAGE检测诱导表达蛋白

  Fig 1.SDS-PAGE of induced expression proteins

  1. Protein markers; 2,3,4. Lysate, supernatant and precitation of vector strain; 5,6,7. Lysate, supernatant and precitation of combinant strain

  为了增加融合蛋白的可溶性表达,我们分别将pGEX-2T-SM表达质粒转入到JM101、JM109、HB101、DH5α、XL-1Blue及BL-21几个不同大肠杆菌中进行表达,结果发现融合蛋白在这些菌体中都可得到表达,而且表达的量相近,但仍主要以包涵体形式存在;通过改变诱导条件的方式也未能奏效。

  4.载体蛋白和融合蛋白的纯化:采用亲和层析介质谷胱甘肽-Sepharose 4B对载体蛋白GST及融合蛋白进行纯化,结果表明,纯化的载体蛋白纯度高,达电泳纯,蛋白含量约为0.9mg/ml。而得到的mMAdCAM-1剪切体融合蛋白含量少,并有少许杂蛋白存在。为了获得大量的纯化蛋白,我们对包涵体进行初步纯化,结果表明,获得的融合蛋白纯度可达63.8 %左右,蛋白质含量为0.4~0.5mg/ml(见图2)。

  图2 纯化蛋白的SDS-PAGE

  Fig 2. SDS-PAGE of purified protein

  1. Protein markers; 2. Supernatant of vector strain; 3. Supernatant of vector strain after elution by Glutathione-sepharose-4B; 4. GST protein after elution by Glutathione-sepharose-4B; 5. Purified fusion protein

  5. mMAdCAM-1剪切体融合蛋白的凝血酶切割实验:融合蛋白与凝血酶作用后可被切成两段,其中一段的Mr约为26×103,与载体蛋白GST大小相等,另一段Mr约为33×103,同推测的mMAdCAM-1剪切体蛋白相近,说明为mMAdCAM-1剪切体蛋白。凝血酶切割后在mMAdCAM-1剪切体蛋白的N端留有两个外加的氨基酸Gly和Ser。在本实验条件下,随着凝血酶用量的增加对蛋白的切割越完全(图略)。

  6. mMAdCAM-1剪切体融合蛋白的免疫学检测: 将亲和层析纯化的mMAdCAM-1剪切体融合蛋白、GST载体蛋白及凝血酶切割后的融合蛋白进行免疫印迹分析实验,结果表明,抗mMAdCAM-1分子的标准单抗MECA-367能够识别融合蛋白及凝血酶切割后融合蛋白中的33×103蛋白条带,但不识别载体蛋白;多抗不仅识别融合蛋白、载体蛋白同时也能识别33×103蛋白。由此证明33×103蛋白即为表达的mMAdCAM-1分子剪切体蛋白。另外,mMAdCAM-1多抗还能识别融合蛋白中的一些杂蛋白(见图3)。

  图3 融合蛋白的免疫印迹分析

  Fig 3.Western blot analysis of the fusion protein

  1. Protein markers; 2,5. Fusion protein; 3,6. Fusion protein digested by thrombin; 4,7. GST protein

  2-4 react with mutli-antibody, 5-7 react with MECA-367

  讨论

  淋巴细胞向淋巴组织和感染部位的定向迁移,是由淋巴细胞表面的粘附分子与表达在组织、器官的血管内皮细胞上的粘附分子相互作用的结果。MAdCAM-1分子特异性表达于肠道相关淋巴组织中,对淋巴细胞向肠道粘膜定向归巢起重要作用。

  我们利用RT-PCR法从BALB/c小鼠的MLN中获得了mMAdCAM-1分子的剪切体。该剪切体5′和3′端核酸序列与全长mMAdCAM-1分子相同,利用合成引物应能扩增出包括mMAdCAM-1全长分子的两种cDNA,但实验中未见全长分子的cDNA扩增条带出现。 我们认为,虽然两种mMAdCAM-1分子在mRNA含量上相近〔6〕,但在扩增过程中它们共用一对引物,存在相互竞争。由于mMAdCAM-1剪切体分子短,在扩增初期将略占优势,由于PCR产物是以指数方式积累的,随着反应循环数不断增加,这种优势将不断被扩大,最终使全长mMAdCAM-1分子的扩增反应处于抑制状态,结果仅有mMAdCAM-1分子剪切体cDNA片段被扩增。

  我们采用pGEX-2T作为原核表达载体,结果发现表达的融合蛋白主要以包涵体形式存在,这同剪切体蛋白分子较大并且含有疏水的跨膜区有关。此时用亲和层析介质纯化上清中的融合蛋白,效果并不好。原因有以下几点: 1. 与上清中存在的可溶性蛋白含量有关。融合蛋白在上清中含量少,与亲和层析介质接触的机会少,因而特异吸附的蛋白含量低;而载体蛋白在上清中含量高,亲和层析蛋白的效果好。 2. 虽然部分融合蛋白以可溶性形式存在,但mMAdCAM-1剪切体蛋白会影响载体蛋白的天然构象,降低其与亲和介质的结合力。我们将处理的可溶性包涵体蛋白进行亲和层析,纯化效果也不理想,这与可溶性包涵体蛋白未能恢复天然构象有关,不能与亲和介质发生特异性吸附。

  在Western blot中可以观察到,mMAdCAM-1的标准单抗MECA-367能特异识别融合蛋白及凝血酶切割后融合蛋白中的33×103蛋白条带,对载体蛋白不识别,说明33×103蛋白为表达的mMAdCAM-1分子;而mMAdCAM-1多抗除识别融合蛋白、mMAdCAM-1分子和载体蛋白外,还与融合蛋白中其它一些蛋白条带起反应,有些位于30×103附近的蛋白条带,经酶切后消失,它们可能是断裂的融合蛋白。

  基金项目:国家自然科学基金资助项目(39789010)

参考文献

  1,Berg EL, McEvoy LM, Berlin C, et al. L-selectin-mediated lymphocyte rolling on MAdCAM-1, Nature, 1993,366:695-698.

  2,Briskin MJ, Rott L, Butcher EC, et al. Structural requirements for mucosal vascular addressin binding to its lymphocyte receptor α4β7. J Immunol, 1996, 156: 719-726.

  3,Yang XD, Michie SA, Mebius QE, et al. The role of cell adhesion molecules in the development of IDDM. Diabetes, 1996, 45:705-710.

  4,Sampaio SO, Li X, Takeuchi M, et al. Organization, regulatory sequences, and alternatively spliced transcripts of the mucosal addressin cell adhesion molecule-1(MAdCAM-1) gene. J Immunol, 1995, 155: 2477-2486.

  5,Briskin MJ, McEvoy LM, Butcher EC. MAdCAM-1 has homology to immunoglobulin and mucin-like adhesion receptors and to IgA1. Nature, 1993, 363: 461-464.

  6,Schiffer SG, Day E, Latanision SM, et al. An alternately spliced mRNA encoding functional domains of murine MAdCAM-1. Biochem Biophy Res Commu, 1995, 216(1): 170-176.

  7,Piotr C, Nicoletta S. Singal-step method of isolation by acid guanidinium thiocyanate-phenol-chloroform extraction. Analy Biochem, 1987, 162: 156-159.

  8,Sambrook J, Fritsch EF, Maniatis T, et al. Molecular Cloning: A Laboratory Manul. 2nd, N Y Cold Spring Harbor Laboratory press, 1989.

(收稿日期:1999-06-02)


作者: 风清扬 2009-2-21
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