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[摘要]目的探讨扇贝多肽(PCF)对中波紫外线(UVB)辐射损伤HaCaT细胞的作用及对细胞外调节激 酶-丝裂原活化蛋白激酶(ERKs/MAPKs)通路的影响。 方法 建立UVB(20 mJ/cm2)对体外培养的HaCaT细胞 辐射损伤的病理模型,实验分为对照组、模型组、UVB+5.69 mmol/L PCF组、UVB+2.84 mmol/L PCF组、UVB+1.42 mmol/L PCF组和UVB+5.69 mmol/L维生素C组。琼脂糖凝胶电泳观察各组不加入或分别加入 Caspase-3抑制剂(DEVD-FMK)、ERKs通路抑制剂(PD98059)后的细胞凋亡情况;Western blot检测ERKs、MEKs 磷酸化与非磷酸化的活性。 结果 PCF能剂量依赖性地减少UVB所致的HaCaT细胞DNA片段的出现;预先应 用ERKs通路抑制剂可使DNA片段增加;预先应用Caspase-3抑制剂使DNA片段减少;PCF还能提高磷酸化 ERKs、MEKs的活性,但不影响总的ERKs、MEKs的含量。结论 PCF能抑制UVB辐射诱导的细胞凋亡,对 UVB辐射损伤的细胞具有保护作用。其作用通过调节ERKs/MAPKs的信号通路和Caspase级联反应实现。
[关键词]扇贝多肽;紫外线;HaCaT细胞;凋亡;细胞外调节激酶-丝裂原活化蛋白激酶
EFFECTS OF POLYPEPTIDE FROM CHLAMYS FARRERI ON UVB-INDUCED HaCaT CELL APOPTOSIS AND MODULATES ERKS SIGNALING PATHWAYS
YU SHUANG,GUO SHEN-BO,YAN ZHOU-PING, et al
(Department of Pharmacology, Qingdao University Medical College, Qingdao 266021, China)
[ABSTRACT] Objective To investigate whether PCF could inhibit apoptosis of HaCaT cells induced by ultraviolet B and to examine the effect of PCF on the ERKs/mitogen-activated protein kinases (ERKs/MAPKs) cascade and Caspase-3 in vitro. Methods Cellular experiments were designed into 6 groups (control, model, UVB+5.69 mmol /L PCF, UVB+2.84 mmol/L PCF, UVB+1.42 mmol/L PCF and UVB+5.69 mmol/L Vit C). Gel electrophoresis was used to observe the DNA ladder of each group with or without Caspase-3 inhibitor, ERKs pathways inhibitor; and Western blot was used to detect the activity of p-ERKs, P-MEKs, ERKs, and MEKs. Results PCF inhibited UVB-induced DNA ladder in HaCaT cells; ERKs pathways inhibitor in- creased the fragment of DNA by UVB; but the inhibition of Caspase-3 reduced the fragment of DNA; PCF enhanced the activity of P-ERKs and P-MEKs, but did not affect the activity of ERKs or MEKs. Conclusion PCF has protective effects against UVB-in- duced apoptotic cell death in HaCaT cells and PCF is likely to exert its cytoprotective effect in HaCaT cells through ERKs/MAPKs activation and caspase cascade.
[KEY WORDS]polypeptide from Chlamys farreri; ultraviolet rays; HaCaT cells; apoptosis; extracellular signal regulated kinases/ mitogen-activated protein kinases
短期集中或长期间断紫外线辐射可引起皮肤损 伤,尤其是日光中的中波紫外线(UVB),与皮肤肿 瘤发生具有一定的相关性,故对紫外线损伤防护作用的研究近年来倍受关注[1]。许多研究结果证明,紫外线照射引起皮肤损伤的发生与诱导表皮细胞凋 亡及激活相关的信号传导通路有关[2]。目前,人们广泛应用抗氧化剂减轻紫外线辐射导致的损伤。然而,抗氧化剂大多具有相对分子质量大、不易吸收的缺点,有的甚至还有毒性。本课题组制备的扇贝多 肽(PCF)属于海洋抗氧化剂,是从栉孔扇贝中提取的水溶性小分子多肽,相对分子质量为879。以往研究表明,它能有效清除化学体系产生的氧自由基,抑制紫外线对人皮肤细胞的氧化损伤[3~6]。为了进一步研究PCF对HaCaT细胞的作用,我们以UVB 辐射损伤的HaCaT细胞为模型,从细胞外调节激 酶-丝裂原活化蛋白激酶(ERKs/MAPKs)通路和半 胱氨酸蛋白酶-3(Caspase-3)的角度探讨了PCF对 UVB辐射HaCaT细胞的保护作用。
1 材料与方法
1.1 实验材料
人类角质形成细胞株HaCaT由韩国延世大学 丁擘晓博士惠赠。完全培养液由DMEM(Gibco公 司)、体积分数0.10的小牛血清(Gibco公司)以及 100 kU/L青霉素和100 mg/L链霉素组成。PCF, 纯度>96%,由中国水产科学院黄海水产研究所提 供,用完全培养液DMEM配制成体积分数0.20的 母液,4 ℃保存备用;MEKs、ERKs、磷酸化MEKs、 磷酸化ERKs抗体购买于Cell Signaling Tech;β肌 动蛋白抗体购买于博士德公司。
1.2 实验方法
1.2.1 细胞培养及分组 HaCaT细胞株用完全培养液,置于37 ℃、含体积分数0.50 CO2的饱和水汽培养箱培养。将指数生长期细胞随机分为6组:对照组、模型组、UVB+5.69 mmol/L PCF组(PCF1组)、UVB+2.84 mmol/L PCF组(PCF 2组)、UVB+1.42 mmol/L PCF组(PCF 3组)和UVB+ 5.69 mmol/L维生素C组(Vit C组)。各给药组在加相应药物后培养2h,除对照组外,其他各组细胞 均经UVB(辐射剂量为20 mJ/cm2)辐射,在辐射前 用PBS洗涤2次。辐射后细胞继续培养18 h进行 以下实验。
1.2.2 细胞凋亡的检测
参照文献[7]方法制备5× 107/L细胞悬液,将其接种于6孔培养板,每孔加3 mL细胞悬液 。于培养箱中培养至指数生长期 时,各组不加入或分别在UVB辐射前0.5 h加入 Caspase-3抑制剂(DEVD-FMK)、ERKs通路抑制剂(PD98059),收集细胞,PBS洗2次,加入细胞裂 解液(5 mmol/L Tris-HCl, pH 8.0; 20 mmol/LEDTA; 5 g/L Triton X-100),50 ℃孵育1 h,然后 加入RNase A(100 mg/L)50 ℃孵育1 h,再加入蛋 白酶K(200 mg/L)50 ℃孵育1 h,裂解的上清用苯 酚-氯仿-乙醇(25∶24∶1,V∶V∶V )抽提。收集沉淀,用体积分数0.70的冷乙醇漂洗1次,沉淀溶于1×TE 缓冲液(10 mmol/L Tris-HCl,pH 8.0,10 mmol/ L EDTA),提取的DNA样本加入含溴化乙锭的15 g/L琼脂糖凝胶,60 V电泳1 h后在紫外 线灯下观察并照相。
1.2.3 MEKs、ERKs、磷酸化ERKs、磷酸化MEKs检测
按文献[8]报道的Western blot方法检测。 细胞无血清培养24 h后,直接裂解于裂解缓冲液(含20 mmol/L Tris-HCl,pH 7.7,250 mmol/LNaCl,2 mmol/L EGTA,5 g/LNP 40 ,100 g/Lglycerol,20 mmol/L 3-glycerphsphate,1 mmol/LNa3VO4)30 min,12 000 r/min离心10 min,取上清分装。考马斯亮蓝蛋白测定法测定蛋白浓度[8] 。取 100 μg蛋白经体积分数0.10 SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳后,转至硝酸纤维素膜。在含体积分数0.01的一抗(MEKs、ERKs、磷酸化-ERKs、磷酸化-MEKs 的单克隆抗体)的封闭液中,4 ℃摇晃过夜;TBST (含 1×TBS ,1 g/L Tween 20)漂洗3次,每次各5 min ;在含1∶2 000稀释HRP标记第二抗体的封闭液中,室温摇晃1 h;TBST漂洗3次,每次5 min; DAB显色。每组实验至少重复3次。应用图像灰 度软件对免疫反应的条带进行显像密度测定。
1.3 统计学处理
计量资料用 x±s 表示,用SPSS软件对结果进 行单因素方差分析。
2 结 果
2.1 PCF对UVB辐射HaCaT细胞DNA片段的影响
DNA凝胶电泳显示,HaCaT细胞在20 mJ/cm2的UVB辐射剂量和辐射后培养18 h内的条件下,呈现特征的阶梯状DNA凋亡带,而对照组呈现 单一条带。与对照组比较,模型组细胞DNA断裂 明显,呈现特征的阶梯状DNA凋亡带,且梯状带灰度较高;与UVB模型组比较,PCF各组梯状带不明 显,灰度减弱,PCF 3组的图像与对照组相接近(图1a)。当预先给予Caspase-3抑制剂时,UVB模型 组的凋亡带不明显,PCF各组则可完全阻断UVB 辐射诱导的凋亡(图1b)。当预先给予ERKs通路 的抑制剂(PD98059)与PCF共孵育,UVB辐射后 出现典型的凋亡带(图1c)。 2.2 PCF对HaCaT细胞受UVB辐射后ERKs、MEKs活性的影响与UVB模型组比较,各PCF组与Vit C组中 磷酸化ERKs、MEKs活性均有增高,其中在PCF 1 组中磷酸化ERKs、MEKs的活性升高明显,灰度最 深;而Vit C组与PCF 2组中磷酸化ERKs、MEKs 则次之,PCF 3组灰度亦高于UVB模型组,但深度 要比Vit C组与PCF 2组浅。结果表明,PCF可明 显增强磷酸化ERKs、MEKs的活性。而总MEKs、 ERKs各组之间无明显差异。见表1,图2、3。 表1 PCF对UVB辐射后HaCaT细胞MEKs、ERKs活 性影响( 略)
3 讨 论
由于UVB主要由皮肤表皮吸收,且可以直接 损伤细胞DNA或诱发氧化反应产生自由基而损伤 皮肤,因此被认为是导致皮肤损伤和皮肤癌的主要光谱[9]。故关于UVB对人角质形成细胞的作用,尤其是诱导凋亡的研究越来越多。大多数研究表明,在一定剂量范围内,UVB能以时间和剂量依赖 的方式引起体内及体外培养的角质形成细胞发生凋 亡,但是其剂量和时间范围不尽一致。本实验的结果表明,20 mJ/cm2的UVB剂量辐射后培养18 h,UVB能以时间和剂量依赖的方式引起角质形成细胞发生凋亡。细胞凋亡时主要的生化特征是染色质发生浓缩,染色质DNA在核小体单位之间的连接 处断裂,形成50~300 kbp长的DNA大片段,或180~ 200 bp 整数倍的寡核苷酸片段,凝胶电泳检 查结果出现梯形电泳图谱(DNA Ladder),而正常细 胞DNA呈单一条带,坏死时则呈模糊的弥散状条带[10],所以DNA Ladder被认为是凋亡特征性指标。本实验研究结果表明,PCF具有抗HaCaT细胞凋亡的作用。UVB辐射损伤的HaCaT细胞呈 典型的凋亡生化改变,这种改变在模型组最为明显。用不同浓度的PCF预处理可减轻细胞受损,以5.69 mmol/L 的PCF效果为优(DNA表现为单一 条带),说明PCF对UVB损伤HaCaT细胞具有保 护作用。 Caspase是近年来发现的哺乳动物细胞凋亡相 关蛋白酶,现已发现的该家族10个成员中,最引人 瞩目的是Caspase-3。根据GenBank人类EST(ex- pressed sequencetag)提供的信息,采用PCR方法, FERNANDES-ALNEMRI等 [11]于1994年从人类 Jutkat T细胞系中克隆出Caspase-3基因,并证明 其与该家族第一个被发现的成员ICE(interleukin-1;3-converting enzyme)有同源性。大量的实验证明,细胞凋亡是一个复杂的、由Caspase家族成员介 导的蛋白酶级联反应过程。Caspase蛋白酶在组织 分布和降解已知底物的功能上彼此有重叠现象,但在不同组织细胞或同一细胞受同一刺激诱发凋亡过 程中,激活的Caspase不尽相同。但普遍认为,该家 族成员Caspase-3是哺乳动物细胞凋亡的关键蛋白酶[12]。在Caspase家族中Caspase-2、8、9、10等属 于上游,Caspase-3、6、7处于下游,其中Caspase-3/7 是细胞凋亡最后的共同途径[13]。SHIMLZU等[14]使用25 mJ/cm2UVB对人KC细胞进行辐射诱导 凋亡过程中,预先将细胞用Caspase-3抑制剂处理后,UVB诱导的凋亡被抑制了60%,提示Caspase- 3在UVB诱导KC细胞凋亡中具有一定作用。本文结果表明,UVB能够诱导HaCaT细胞的凋亡,但预先给予Caspase-3抑制剂,琼脂糖凝胶电泳显 示DNA Ladder形成明显降低。提示Caspase-3参 与了PCF对抗UVB辐射诱导的HaCaT细胞的凋 亡效应。ERKs是MAPKs主要成员之一,ERKs是一种胞浆内广泛分布的丝氨酸-苏氨酸蛋白激酶,以往的研究认为,ERKs主要与细胞增殖和分化密切相关[15]。但近年的研究发现,ERKs还参与细胞凋亡的调节。FAN等[16]研究结果表明,抗氧化剂通过激活ERKs途径保护中性粒细胞不发生凋亡。鉴于ERKs信号通路在UVB诱导HaCaT细胞凋亡过 程中的作用尚不明确,更重要的是ERKs信号通路是否参与了PCF抗UVB辐射诱导的HaCaT细胞 的凋亡效应?本文研究了PCF对UVB辐射前后 HaCaT细胞中磷酸化与非磷酸化MEKs、ERKs含 量的影响,以明确PCF抗UVB辐射诱导的HaCaT细胞的凋亡效应中ERKs信号通路的作用。实验结 果显示,预先给予特异性抑制ERKs通路的抑制剂 PD98059,琼脂糖凝胶电泳显示DNA Ladder明显 地增多。结果提示抑制ERKs通路增强了UVB诱 导的HaCaT细胞的凋亡,确证了ERKs信号通路 在UVB诱导凋亡中的作用,即ERKs信号通路的 失活能引起随后的HaCaT细胞的凋亡;而各PCF组电泳结果显示DNA Ladder明显地增多,表明PCF抗UVB诱导HaCaT细胞凋亡的作用是通过 ERKs信号通路实现的。为了进一步阐明PCF对ERKs信号通路的影响,本文应用Western blot方法,使用抗ERKs和 MEKs特异性双磷酸位点抗体检测发现,HaCaT细 胞在受到UVB(20 mJ/cm2)刺激后,细胞内磷酸化ERKs、MEKs显著降低,而与UVB模型组比较,1.42 、2.84、5.69 mmol/L PCF组中磷酸化ERKs、MEKs活性均明显增高,并且以5.69 mmol/L PCF组磷酸化ERKs、MEKs活性升高最明显。但使用总ERKs、MEKs抗体研究发现,在UVB辐射后,ERKs、MEKs的总量并无明显变化,而PCF能剂量依赖性增强ERKs、MEKs的磷酸化水平,证明ERKs、MEKs以活化形式参与了PCF抗UVB诱导的HaCaT细胞凋亡的作用。提示PCF抗UVB的氧化损伤作用机制在于激活ERKs信号级联,即 增强了活化的Raf对MEKs的磷酸化,从而进一步使ERKs磷酸化,磷酸化ERKs使细胞内相关的转录因子磷酸化而发挥作用。本文在建立UVB(20 mJ/cm2)对HaCaT细胞氧化损伤和凋亡的模型基础上,首次在ERKs/MAPKs信号传导通路和Caspase-3级联通路上探 讨了PCF对紫外线损伤HaCaT细胞的保护作用机 制。PCF抗UVB辐射诱导的HaCaT细胞的凋亡效应,是通过增强ERKs、MEKs激酶的磷酸化水平来实现的,同时Caspase-3级联亦参与了PCF的保护作用。
[参考文献]
[1] BODE A M, DONG Z. Mitogen-activated protein kinase acti- vation in UV-induced sis,transduction[J]. STKE, 2003(167): 112-123.
[2] VERHEIJ M,BARTELINK H.Radiation-induced apoptosis [J]. Cell Tissue Res, 2000,31(1):133-145.
[3] WANG C B,YAO R Y, LIU Z T, et al. Protective effect of polypeptide from Chlamys farreri on hairless mice damaged by ultraviolet A [J]. Acta Pharmacol Sin, 2002, 23(9): 813- 818.
[4] HAN Y T, HAN Z W, GUO Y, et al. Inhibitory effect of polypeptide from Chlamys farreri on ultraviolet A-induced oxi- dative damage on human skin fibroblasts in vitro [J]. Phar- macol Res, 2004,49:265-274.
[5] 黄绵庆,阎春玲,窦梅,等. 扇贝多肽对UVB损伤HaCaT细胞 的抗氧化作用[J]. 中国海洋药物杂志, 2005,24(3):29-31.
[6] WANG C B, DING B X, GUO S B, et al. Protective effect of polypeptide from Chlamys farreri on mitochondria in human dermal fibroblasts irradiated by ultraviolet B [J]. Acta Phar- macol Sin, 2003,24(7):692-696.
[7] HE Y Y, HUANG J L, DARIO C, et al. Role of reduced glu- tathione efflux in apoptosis of immortalized human keratino- cytes induced by UVA[J]. Invest Dermatol, 2001,117(5): 1171-1178.
[8] XIAO C,CHEN S,LI J,et a1.Asseeiation of HSP T0 and genoloxic damag in lymphocytes of workers exposed to coke- oven enfission[J]. Cell Stress Chap, 2002,7:396-402.
[9] HOMER S, BLACK. Reassessment of a free radical theory of cancer with emphasis on ultraviolet carcinogenesis[J]. Inter Cancer Ther, 2004, 3: 279-293.
[10] MITSUI H,TAKUWA N,MARUYAMA T,et al. The MEK1-ERK map kinase pathway and the PI 3- Kinase-Aktpathway independently mediate anti-apoptosis signals in HepG2 liver cancer cells[J]. Int J Cancer, 2001,92:55-62.
[11] FERNANDES -ALNERMRI T, LJTWACK G ,AINERCLER ES.A novel human apoptotic protein with homology to cae-orhabditis elegans cell death protein ced-3 and mammalian in-terleukin-1 converting enzyme[J]. J Biol Chem,1994,269: 30761-30764.
[12]ZERIHUN A, GEERT B, KAROLINA S, et al.Caspase-3-in-
duced truncation of type 1 inositol trisphosphate receptor accel-erates apoptotic cell death and induces inositol trisphosphate-independent calcium release during apoptosis[J]. J Biol Chem,2004,279: 43227-43236.
[13] MOHAMMED W, AL-RABI,MORGAN G, et al. Mem-brane receptor-mediated apoptosis and caspase activation in the differentiated EoL-1 eosinophilic cell line[J]. J Leukoc Biol,2004,75: 1045-1055.
[14] SHIMLZU H, BANNO Y, SUMI N, et al. Acdvation of p38 mitogen-actlvated protein kinases and caspases in UVB-induced apoptoais of tanankeratinocyte Ha Cells [J]. In vest Derma-tol, 1999,112(5):769-784.
[15] DENT P, YACOUB A, FISHER P B, et al.MAPK pathways in radiation responses[J]. Oncogene, 2003, 2(37):5885-5896.
[16] FAN M, GOODWIN M E, BIRRER M J, et al. The c-Jun NH2-terminal protein kinase/AP-1 pathway is required for ef- ficient apoptosis induced by vinblastine[J]. Cancer Res, 2001,61:4450-4463.
[基金项目] 国家自然科学基金(No.30471458)和山东省自然 科学基金(No.Y2003c02)资助项目
1 青岛大学医学院药理学教研室,山东 青岛 266021;
2 海慈医疗集团;
3 中国水产科学院黄海水产研究所