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首页医源资料库在线期刊中国矫形外科杂志2007年第15卷第10期

关节软骨撞击伤后软骨细胞凋亡的实验研究

来源:《中国矫形外科杂志》
摘要:【摘要】目的]用TUNEL标记法和透射电镜来观察软骨撞击伤后软骨细胞凋亡的演变情况。不同重量的击锤撞击股骨内侧髁软骨面致不同的损伤。术后4d,1、2、4、8、16、32周收集标本,每个时间组4只兔子,进行TUNEL标记法和透射电镜来观察软骨细胞的凋亡。[结果]对照组标本中在软骨的中间层和钙化层,出现凋亡细胞。...

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【摘要】  目的]用TUNEL标记法和透射电镜来观察软骨撞击伤后软骨细胞凋亡的演变情况。[方法]56只健康成年新西兰大白兔,随机分高、低能量两组,每组28只,随机选取一侧后肢为实验组,另一侧为对照组;不同重量的击锤撞击股骨内侧髁软骨面致不同的损伤。术后4 d,1、2、4、8、16、32周收集标本,每个时间组4只兔子,进行TUNEL标记法和透射电镜来观察软骨细胞的凋亡。[结果]对照组标本中在软骨的中间层和钙化层,出现凋亡细胞。低能量组中,伤后4 d,1、2周的标本中,软骨的移形层和过渡层出现凋亡细胞,细胞凋亡率与对照组之间无统计学意义;4周后的标本中凋亡细胞明显减少,细胞凋亡率与对照组之间无统计学意义。高能量组中,伤后4 d软骨浅表层和移形层中出现凋亡细胞,而且伤后时间越长凋亡细胞所占比率越大,细胞凋亡率与对照组之间有统计学意义。[结论]软骨高、低能量撞击伤后早期软骨细胞均出现凋亡,凋亡率高于对照组;但低能量伤后4周软骨细胞凋亡率恢复到对照组水平;高能量伤后软骨细胞凋亡率随时间逐渐增高。

【关键词】  软骨损伤; 软骨细胞; 凋亡; 创伤性骨关节炎


  近来的研究表明,骨关节炎和体外软骨损伤模型中,可观察到软骨细胞的凋亡。随着骨关节炎严重程度加重,软骨细胞的凋亡率也随之增加,机械损伤也能诱导软骨细胞的凋亡,后者可能是软骨细胞对机械损伤的最早反应之一[1,2]。体内关节软骨受到撞击伤后,软骨细胞的凋亡率如何演变人们还缺乏足够的认识。本实验在Newberry、Vrahas模型的基础上,建立兔股骨内侧髁软骨损伤不同的模型,用TUNEL标记法和透射电镜观察软骨损伤后软骨细胞凋亡的演变情况。

  1  材料与方法

  1.1  动物及分组
   
  56只健康成年新西兰大白兔,雌雄不限,体重3.0~3.5 kg,随机分为轻、重2组,每组28只,随机选取一侧后肢为实验组,另一侧为对照组。再随机分为术后4 d,1、2、4、8、16、32周7个时间组,每组4只动物。

  1.2  关节软骨损伤模型的建立

  1.2.1  5%水合氯醛1.25 ml/kg腹腔注射麻醉,取仰卧位,脱毛,常规消毒铺巾。

  1.2.2  膝关节内侧纵形切口,长3 cm,依次切开皮肤、皮下组织、深筋膜、关节囊,将髌骨外翻,膝关节屈曲120°,使股骨干与水平面垂直,骨盆固定带固定骨盆,用大腿固定带固定大腿防止撞击时不稳定。

  1.2.3  用1.33、0.43 kg的击锤分别于46、20 cm高处通过导杆自由坠落,产生的能量为6.3 J(能造成胶原网架断裂)和0.9 J(不能造成胶原网架断裂)[2、3],再通过撞击体致股骨内侧髁软骨面的损伤。对照侧不行撞击,余步骤同试验组。术毕庆大霉素生理盐水冲洗关节腔,逐层缝合伤口。麻醉清醒后笼内自由活动。术后肌注青霉素20万单位,每日2次,连用3 d。
   
  (4)于术后4 d,1、2、4、8、16、32周收集标本,进行TUNEL标记法和透射电镜来观察软骨细胞的凋亡。

  1.3  形态学观察

  1.3.1  取材、固定
   
  各组于观察期满后,在相同位置用锋利双面刀片软骨下骨处切取0.5 cm×0.4 cm×0.2 cm的软骨,不取软骨下骨,避免了因标本脱钙过程中破坏细胞造成假阳性。标本切成2等份,1份立即置于10%中性福尔马林溶液中在室温下固定24h后,石蜡包埋组织块,作连续切片,片厚为51 μm,制成病理切片备用。另1份备做透射电镜之用。

  1.3.2  TUNEL末端标记
   
  病理切片常规脱蜡,梯度酒精补水后,切片滴加蛋白酶K修复抗原。滴加20%小牛血清和3%小牛血清白蛋白封闭非特异性反应。在DNA片段标记后,用0.3%H2O2阻断内源性过氧化物酶,室温,15 min。切片滴加20%羊血清、3%小牛血清白蛋白及1%封阻剂,37℃,15 min,再次封闭非特异性反应。切片滴加1∶2稀释的POD 20 μl,置湿盒内,37℃,30 min进行免疫反应,扩大信号。镜控下,DABH2O2显色。胞核呈深棕色即用自来水流水冲洗终断反应。苏木精复染。梯度酒精脱水,二甲苯透明,树胶封片。

  1.3.3  透射电镜
   
  将标本放入5%戊二醛保存液中浸润保护,用锋利的双面刀片冠状面将软骨切成1 mm3小块,立即投入4℃ 5%戊二醛溶液中固定24 h后,0.1 mol/L二甲砷酸钠缓冲液(pH7.35)漂洗24 h。1%锇酸后固定2 h,乙醇逐级脱水后环氧树脂包埋,超薄切片机70 nm超薄切片,经醋酸双氧铀及柠檬酸铅双重染色,HITACHI600透射电镜观察,拍片。

  1.4  图像分析
   
  每1张TUNEL标记切片显微摄像镜下(放大10×40),随机选取4处视野,将图像捕获入计算机,形成后缀名为JPEG的彩色数码图像。在MIOS2000图像分析仪内做图像分析,采用目标计数,测定软骨细胞凋亡率,算术平均后得到每张切片的细胞凋亡率。

  1.5  统计学处理
   
  用SPSS 12.0统计软件包,按高、低能量组与相应对照组分别进行两两比较,采用t检验,取95%可信区间,观察各实验组与对照组的软骨细胞凋亡率有无统计学差异。

  2  结果
   
  术后所有实验动物均存活至预定取材时间,切口愈合好,无1例感染。

  2.1  TUNEL标记法软骨细胞凋亡率的观测
   
  软骨细胞核呈橙黄色的为凋亡细胞,蓝色的为正常细胞。对照组标本中在软骨的中间层和钙化层,出现凋亡细胞。低能量组中,伤后4 d,1、2周的标本中,软骨的移形层和过渡层出现凋亡细胞,细胞凋亡率与对照组之间无统计学意义;4周后的标本中凋亡细胞明显减少,细胞凋亡率与对照组之间无统计学意义(P<0.01)(图1、2)。高能量组中,伤后4 d软骨浅表层和移形层中出现凋亡细胞,且伤后时间越长凋亡细胞所占比率越大,细胞凋亡率与对照组之间有统计学意义(图3、4)。

  2.2  透射电镜
   
  高、低能量撞击组软骨细胞凋亡的特征性表现为:细胞偏离胞周基质,胞浆内空泡形成,细胞器减少,残存粗面内质网扩张,核膜不规则,核固缩或细胞碎裂,染色质浓缩、边聚(图5)。对照组的胞周基质清晰浓密,细胞位于陷窝内,软骨细胞胞膜及核膜完整,胞浆内细胞器明晰可见,胞周基质清晰浓密,内质网、线粒体和高尔基体等细胞器丰富(图6)。

  3  讨论
   
  在正常关节软骨中,1%软骨细胞可见凋亡征象,凋亡主要发生于软骨肥大层,随着年龄的增加,软骨细胞凋亡率也逐步增加。骨关节炎中可见50%的软骨细胞凋亡,可发生于软骨全层。软骨细胞的异常死亡势必影响软骨分解及合成代谢的动态平衡,可见,软骨细胞异常凋亡参与了骨关节炎的病理过程。
   
  机械损伤能够引起软骨细胞的死亡,但是死亡形式是通过凋亡或是坏死还有待进一步证实。Tew等[3]用环钻造成软骨损伤后,光学显微镜、透射电镜和TUNEL法观察软骨细胞的死亡形式,在伤口的边缘出现软骨细胞凋亡,表现为细胞核浓缩和固缩,胞浆萎缩,细胞偏离胞周基质,这与本研究中观察到的软骨细胞凋亡情况相一致。Loening等[4]在体外用2~30 MPa压力撞击牛的软骨,采用TUNEL法观察软骨细胞的凋亡,发现在中度撞击会导致软骨细胞凋亡的明显增加,软骨在撞击伤后,出现其它变化时,凋亡是最早出现的反应形式之一。D′Lima等[5]在体外将机械力加载到培养牛的关节软骨细胞上,发现软骨细胞凋亡率随加载力的增加而增加。进一步通过电镜和原位末端DNA片段标记技术证实,培养牛的软骨细胞受到创伤后,邻近损伤处的软骨细胞凋亡率也明显增加。
   
  本研究分别用6.3、0.9 J不同能量撞击兔股骨内侧髁造成软骨不同的损伤,伤后4 d,1、2、4、8、16、32周取标本,TUNEL法和透射电镜法来观测软骨细胞的凋亡,有其特异性和敏感性。结果表明,关节软骨被撞击后软骨细胞均出现凋亡,凋亡的软骨细胞以浅表层和中间层较多,高能量伤后软骨细胞的凋亡率明显较低能量组高,伤后时间越长,细胞凋亡现象越重。而低能量伤后4 d也出现凋亡,4周后细胞凋亡现象不再明显。由此作者认为,高能量伤不但造成细胞损伤,而且软骨有裂隙,胶原纤维网架断裂,完好的软骨细胞不能修复此类损伤,结果造成软骨细胞受到长期反复的慢性损伤,导致凋亡进一步加重,这样使胶原纤维网架遭到进一步损伤,形成恶性循环,以致凋亡程度随伤后时间延长而加重。低能量伤开始出现的凋亡表明在撞击时直接使软骨细胞受到损伤,但由于胶原纤维没有断裂,使软骨细胞免遭进一步损伤,才出现其损伤后4周软骨细胞凋亡率与对照组的差异无统计学意义。
   
  通过本研究表明,软骨的损伤中,软骨细胞的凋亡可能是促使软骨退变的重要因素之一,但胶原纤维网架是否完整也许对软骨的持续损伤更重要。

  (本文附图见加页2)(略)

【参考文献】
    [1] Costouros JG,Dang AC,Kim HT. Comparison of chondrocyte apoptosis in vivo and in vitro following actue osteochondral injury[J].J Orthop Res,2004,22:678-683.

  [2] 王东明.膝关节软骨钝性损伤的研究进展[J].中国矫形外科杂志,2005,13(16):1263-1265.

  [3] Tew SR,Kwan APL,Hann A,et al.The reaction of articular cartilage to experimental wounding. The role of apoptosis[J].Arthritis Rheum,2000,43:215-225.

  [4] Loening AM,Janes IE,Levenston ME,et al. Injurious mechanical compression of bovine articular cartilage induces chondrocyte apoptosis[J].Arch Biochem Biophys,2000,381:205-212.

  [5] D'Lima D,Hashimoto S,Chen PC,et al.Cartilage injury induces chondrocyte apoptosis[J].J Bone Joint Surg(Am),2001,83(2): 19-21.


作者单位:江苏大学附属医院骨科,镇江 212000;四川大学华西医院骨科,成都 610041

作者: 邵世坤,裴福兴,狄东华,赵建忠 2008-5-30
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