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【摘要】 目的 研究西洋参茎叶皂苷(PQS)对大鼠局灶性脑缺血后caspase9表达的影响,并进一步探讨其机制。方法 采用线栓法阻断大鼠一侧大脑中动脉(MCA),制备局灶性脑缺血模型,RTPCR技术检测大脑皮质凋亡相关基因caspase9 mRNA表达。结果 西洋参茎叶皂苷能明显降低局灶性脑缺血大鼠脑组织凋亡相关基因caspase9 mRNA表达。结论 西洋参茎叶皂苷对大鼠局灶性脑缺血具有保护作用,其机理可能与西洋参茎叶皂苷抑制神经元细胞凋亡有关。
【关键词】 西洋参茎叶皂苷;脑缺血;细胞凋亡;caspase9
【Abstract】 Objective To investigate the effects and the further mechanism of Panax quinquefolium saponins from stems and leaves (PQS) on caspase9. Methods The rats with incomplete cerebral ischemia were induced with line occlusion in the middle cerebral artery (MCA). Caspase9 mRNA in the cortical neuron was detected with reverse transcription polymerase chain reaction (RTPCR). Results Panax quinquefolium saponins significantly reduced the expression of caspase9 mRNA. Conclusion Panax quinquefolium saponins have protecting effect on cerebral ischemia,and the mechanism is related to inhibition of cell apoptosis.
【Key words】 Panax quinquefolium saponins from stems and leaves; cerebral ischemia; cell apoptosis; caspase9
脑血管病(CVD)是一种在世界范围内威胁人类健康的主要疾病之一,尤其是中、老年人具有发病率高、死亡率高、致残率高及复发率高的特点,研究一种能有效防治缺血性脑血管病的药物具有重要的意义。西洋参茎叶皂苷(PQS)是从西洋参茎叶中提取的有效成分,具有多种药理作用,但对脑缺血细胞凋亡的研究较少,因此对PQS抗凋亡作用的研究,不仅能为综合利用开发西洋参资源,而且为研发抗脑缺血的新药奠定理论和实验依据。本研究利用RTPCR等技术手段,观察PQS对脑组织凋亡相关基因的影响,皆在从基因水平探讨PQS对局灶性脑缺血损伤的保护作用及其作用机制。
1 实验材料
1.1 试验药物
PQS(纯度>90%)由吉林大学基础医学院有机化学教研室提供;尼莫地平片(规格:20 mg):山东鲁抗医药集团赛特有限责任公司。
1.2 主要试剂
DNA Marker D2000,引物核苷酸片段,TRIquick Reagent,三羟甲基氨基甲烷(TRIS ),N马林代丙磺酸(MOPS),甲酰胺(FORMAMIDE),溴化乙锭(EB),乙二胺四乙酸(EDTA)等。
1.3 主要仪器
SWCJ2F型净化工作台(苏州净化设备有限公司),Z36HK型台式高速低温离心机(德国Hermle公司),MyCyclerPCR仪(美国BIORAD公司),Alpha Imager EC型凝胶成像分析系统(美国Alpha Inntech公司),DYY8C型电泳仪和DYCP31D型水平电泳槽(北京六一仪器厂)等。
1.4 实验动物
健康Wistar大鼠,体重300 g±20 g,雄性,鼠龄4~5个月,由黑龙江中医药大学药物安全性评价中心提供,动物合格证号:SYXK黑2008001.
2 实验方法与步骤
2.1 动物分组及给药
取50只Wistar大鼠随机分为5组,每组10只,分别为PQS高、低剂量组、尼莫地平组、模型组、假手术组。PQS高剂量组100 mg/(kg·d)、低剂量组50 mg/(kg·d)、尼莫地平组21.6 mg/(kg·d)、模型组及假手术组给予同体积的生理盐水。各组均采取口服灌胃给药途径,每天给药一次,连续给药7天。最后一次给药30 min后,除假手术组外均参照longa法制备右侧大脑中动脉阻塞MCAO模型,在造模符合标准的动物中每组随机取出6只进行实验,假手术组动物仅行血管剥离术,术后随机取出6只进行实验。
2.2 RTRCR检测caspase9 mRNA的表达
2.2.1 引物设计
引物自行设计,以βactin为内参照,引物具体序列信息如下:(1)caspase9(Gene Bank NM_031632.1)引物序列:上游引物为5'-CTGCAGACACCAGCATCACT-3';下游引物为5'- AGGACCAGGCTCACTTAGCA-3';扩增产物片段长度327 bp.(2)内参照βactin(Gene Bank NM0311442)引物序列:上游引物为5'- TCTATGAGGGTTACGCGCTC-3';下游引物为5'- CTTCTGCATCCTGTCAGCAA-3';扩增产物片段长度452 bp.
2.2.2 取材
大鼠局灶性脑缺血后24 h,断头处死动物,取缺血侧大脑额顶叶皮质约100 mg,迅速将所取组织用锡纸包裹、编号,然后放进盛有液氮的保温瓶中进行快速冷冻,最后放入86℃超低温冰箱中保存备用。
2.2.3 总RNA提取
取出冻存的脑组织60 mg,置于研钵中,加入1 ml Trizol 充分研磨,抽提匀浆。将匀浆移入1.5 ml Eppendorf管,冰浴5 min.每管加入0.2 ml氯仿,剧烈震荡15 s,冰浴3~5 min.12 000 r/min、4℃,离心5 min,取水相移入1.5 ml新Ep管,加入等体积异丙醇(约为0.4 ml),混匀,冰浴放置10 min.12 000 r/min、4℃、离心10 min,弃去上清液,加入1 ml 75%乙醇(DEPC水配制),震荡拍匀。7 000 rpm、4℃,离心5 min,弃去上清液,超净工作台下倒置于干净滤纸上,自然干燥1~2 min,加入DEPC水30 μl混匀、溶解RNA,70℃保存。
2.2.4 RNA纯度与完整性鉴定
总RNA 的完整性和纯度要求:甲酰胺10 μl,37%甲醛3.5 μl,10 ×MOPS 2 μl,RNA样品液4.5 μl混匀,1%琼脂糖凝胶电泳,凝胶成像系统观察样品28 s rRNA与18 s rRNA分离完整,且紫外分光光度计检测RNA样品A260/A280在1.8~2.0之间者为样品纯度合格。
2.2.5 RTPCR反应
按试剂盒程序操作配制RTPCR反应体系配制,然后移入PCR仪,按以下条件进行PCR反应:Caspsae9:①50℃ 30 min;②94℃ 2 min;③94℃ 30 s;④54℃ 30 s;⑤72℃ 30 s;⑥72℃ 7 min,其中③④⑤循环30 cycles.βactin:①50℃ 30 min;②94℃ 2 min;③94℃ 30 s;④56℃ 30 s;⑤72℃ 30 s;⑥72℃ 7 min,其中③④⑤循环30 cycles.
2.2.6 PCR扩增产物电泳及半定量分析
取3 μL目的基因PCR产物和3 μL对应βactin基因PCR产物,加2 μL上样缓冲液,在90 V电压下进行1.5%琼脂糖凝胶电泳,时间为50 min.电泳完毕后,应用凝胶成像系统拍照,并用Imagepro Plus 6.0分析软件测定产物的累积光密度值(IOD),以目的基因产物IOD值与βactin产物IOD值之比表示目的基因mRNA的含量。
2.3 统计学方法
应用 SPSS17.0 统计分析软件进行统计学分析,实验结果以均数±标准差(±s)表示,单因素方差分析(OneWay,ANOVA)进行组间差异的比较,显著性差异水平以 0.05 和 0.01 为标准。
3 大鼠脑组织凋亡基因mRNA 表达产物分析
对大鼠脑皮质组织提取的RNA经RTPCR扩增后,分别于327、452 bp处出现了亮度不同的条带,说明各组均有Caspase9 mRNA的表达(见图1)。对各组条带进行吸光度分析(表1),可见模型组Caspase9 mRNA表达较假手术组明显增加,差异有显著性意义(P<0.01),PQS高剂量、低剂量组及尼莫地平组Caspase9 mRNA的表达较模型组明显减少,差异有显著性意义(P<0.05或P<0.01)。
4 讨论
细脑凋亡受基因编码调控,脑缺血后,凋亡相关基因及其表达产物发生了变化,导致细胞凋亡的发生。影响细胞凋亡的基因按其表达物对凋亡过程的作用大致可分为两类:一类为存活基因,主要包括Bcl2、BclxL、HSP、Cfos、sFas等,起抑制凋亡的作用;另一类为致死基因,主要包括caspases家族、Bax、Bad、NFkB、p53、Fas/Fasl等,起促进凋亡作用[1,2],其中被研究较多的有Bcl2家族、caspase家族、P53等。表1 各组大脑皮质Caspase9 mRNA表达的比较图1 大脑皮质凋亡相关基因caspase9 RTPCR凝胶电泳图
目前发现脑缺血后神经元凋亡其信号转导通路有3条,即死亡受体通路、线粒体通路和caspase非依赖性途径,以前两条通路为主。死亡受体通路是指细胞表面的死亡受体[主要包括Fas/Apo1和肿瘤坏死因子受体1(TNFR1)]通过其细胞外结构域与相应的死亡配体(FasL和TNFα)结合,将细胞外凋亡信号传入细胞内,激活caspase8 基因,而后激活下游的caspase3基因,最终启动细胞凋亡。线粒体途径是指当细胞受到各种因素的刺激(如缺血、缺氧等),线粒体膜去极化,线粒体膜电位下降,线粒体通透性转变孔开放,释放的凋亡蛋白酶活化因子1(Apaf1)和细胞色素C(Cyt C)在dATP/ATP存在的情况下,形成凋亡体,激活caspase9,继而活化caspase3,引起细胞凋亡[3],可见死亡受体通路和线粒体通路分别以caspase8 和caspase9 基因的激活为特征。有研究证实,脑缺血各亚组caspase8和caspase9 mRNA 及其蛋白质的表达水平均明显升高,而且其分布及动态演变规律与缺血后神经元凋亡的变化基本一致[4]。
本实验利用RTPCR法检测脑缺血后caspase9 mRNA的表达,发现模型组大鼠缺血侧脑组织caspase9 mRNA表达明显升高,PQS可抑制caspase9 mRNA的表达,与缺血后神经元凋亡的变化基本一致,提示线粒体通路参与了脑缺血后神经元凋亡的发生和发展。PQS能抑制细胞调亡而对脑缺血损伤产生保护作用,这可能是对脑缺血损伤保护作用的机制之一。
【参考文献】
[1] Shafer TJ,Atchison WD.Transmitter,ion channel and receptor properties of pheochromocytoma(PC12)cells:a model for neurotoxicological studies[J].Neurotoxicology,1991,12(3):473492.
[2] Yousuf S,Atif F,Ahmad M,et al.Selenium plays a modulatory role against cerebral ischemiainduced neuronal damage in rat hippocampus[J].Brain Res,2007,11(47):218225.
[3] 高欣,康立源,高秀梅.脑缺血后神经细胞凋亡通路及中药干预[J].中国中医药信息杂志,2007,4(7):9698.
[4] 张鸿,刘艳艳,贾春红,等.大鼠局灶性脑缺血再灌注后caspase8 和caspase9 mRNA 及蛋白质表达[J].中国现代神经疾病杂志,2007,7(6):543547.