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1.适用范围
2.原理概要
试样经加水均质、离心后，取上清液，进行杯碟法测定。利用被测样液中的泰乐菌素残留与藤黄微球菌的作用产生抑菌圈，根据产生抑菌圈的大小用标准曲线法进行定量测定。
3.主要试剂和仪器
3.1.主要试剂
缓冲液(pH8.0±0.1)：称取13.3g无水磷酸二氢钾加入900mL水溶解，再加入100mL6.2％氢氧化钾溶液，混匀，于121℃高压灭菌15min；
生理盐水：称取8.5g氯化钠，溶于1000mL水中，于121℃高压灭菌15min；
泰乐菌素标准品：820μg/mg，由日本和光纯药工业株式会社提供，或等效品；
泰乐菌素标准贮备液：称取适量的泰乐菌素标准品(精确到0.1mg)，先用少量甲醇溶解，再用水定容至1000mL，使其浓度达1000μg/mL，置4℃冰箱保存，可使用8天；
泰乐菌素标准工作液：吸取一定量泰乐菌素标准贮备液，分别用缓冲液稀释成浓度为0.05、0.1、0.2、0.4、0.8μg/mL的标准工作液。需当天配制和使用；
试验菌种：藤黄微球菌(Micrococcusluteus)，菌种号CMCC28001，中国药品生物制品检定所提供；
3.2.仪器
培养皿：内径90mm，底部平整光滑的玻璃皿或塑料皿，具陶瓦盖；
牛津杯：不锈钢圆筒，外径(8.0±0.1)mm、内径(6.0±0.1)mm、高度(10.0±0.1)mm；
游标卡尺：测量范围0～200mm、精度0.02mm，或抑菌圈测量仪；
均质器：不低于10000r/min；
离心机：不低于8000r/min；
恒温培养箱：(30±1)℃，搁板应保持水平；
高压灭菌器；
恒温水浴锅：恒温±1℃。
4.试样的抽取与制备
4.1.检验批
以不超过1020箱(一个车皮)为一检验批。
同一检验批的商品应具有相同的特征，如包装、标记、产地、规格和等级等。
4.2.抽样数量
按批次，每百箱取样三箱，每增百箱增取一箱，尾数不足百箱但超过30箱的增抽一箱。
4.3.抽样方法
按规定的抽样件数随机抽取，逐件开启。每件至少取2枚(冰全蛋不少于100g)作为原始样品，抽取的原始样品总量不少于1kg。放入清洁容器内，加封后，标明标记，及时送交实验室。
4.4.试样制备
从原始样品中，随机分出一半(不少于500g)，鲜蛋需去壳。将蛋黄和蛋白于混合器中充分混匀，装入清洁容器内，作为试样。加封后标明标记。
4.5.试样保存
将试样于－18℃以下保存。
注：在抽样及制样的操作过程中，必须防止样品受到污染或发生残留物含量的变化。
5.过程简述
5.1.样液制备
将试样均质1min(5000r/min)后，再称取20.0g(准确到0.1g)于离心管内，加入5mL水，充分搅匀，放置60min后，离心20min(8000r/min)，取上清液作为样液。
5.2.菌悬液的制备
用约3mL培养基2将培养基1试管斜面上的藤黄微球菌培养物洗下，并移种到克氏瓶中的100mL培养基1的表面上，用灭菌玻璃珠使其均匀地铺于整个表面，在26～32℃培养24h后，用约15mL灭菌生理盐水洗下琼脂表面的培养物，制成菌悬液，置4℃冰箱中可保存2周。
5.3.检定用平板的制备
在测定前，需进行预测试，以求得菌悬液最佳用量。用0.1μg/mL泰乐菌素标准工作液对加有不同量的菌悬液的平板进行测试，经培养后能使0.1μg/mL标准工作液在平板上产生直径大于等于10mm清晰、完整的抑菌圈的菌悬液用量为最佳用量。
注入10mL熔化的培养基3于灭菌培养皿内，水平静置，使其凝固，再于已熔化并冷却至45～50℃的同一培养基内，加入最佳用量的菌悬液使之充分混合后，取约4mL注入上述已铺有培养基3的平板上，保持水平，使其凝固。所用平板需当天制备。
5.4.标准曲线的绘制
用泰乐菌素标准工作液制备标准曲线，以0.2μg/mL浓度的标准工作液为参考浓度。以0.05μg/mL浓度的标准工作液作阴性对照。每个标准工作液浓度取3个检定用平板作为一组，每个平板上置4个牛津杯，使牛津杯在半径为2.5cm的圆面成90°角间距，对角两个杯中加入0.2μg/mL参考浓度标准工作液，另两个对角杯中加入其他一种浓度的标准工作液。4个浓度标准工作液共12个检定平板，用于制备标准曲线。其中0.2μg/mL参考浓度的标准工作液将得到24个抑菌圈直径的数值而其他标准工作液分别得到6个抑菌圈直径的数值。
盖好陶瓦盖，置(30±1)℃培养(17±1)h。翻转平板，除去牛津杯，精确地测量各个浓度产生的抑菌圈直径(精确到0.1mm)，求得各自的平均值，再求出0.2μg/mL参考浓度24个抑菌圈直径的平均值，求出参考浓度的抑菌圈直径的总平均值与每组平板参考浓度的抑菌圈直径平均值之差，即为各组平板的校正值。将校正后的值用式(1)和式(2)算出L和H点的直径值，在半对数坐标纸上，以抑菌圈直径(mm)为横坐标(算术级)，泰乐菌素浓度(μg/mL)为纵坐标(对数级)，通过L和H点连一直线，即为标准曲线。
L＝7a＋4b＋c－2d……………………………(1)
10
H＝7d＋4c＋b－2a……………………………(2)
10
式中：L——标准曲线上最低浓度(0.1μg/mL)抑菌圈的直径；
H——标准曲线上最高浓度(0.8μg/mL)抑菌圈的直径；
b——参考浓度0.2μg/mL的24个抑菌圈直径的平均值，mm；
a、c、d——分别表示标准曲线中其他标准浓度(0.1、0.4、0.8μg/mL)的抑菌圈直径经校正后的平均值，mm。
5.5.样液的测定
每份样液取3个检定平板，在每个平板上置4个已灭菌的牛津杯(按制备标准曲线方法放置)。在对角的2个牛津杯里注满被检样液，在剩余的2个牛津杯里分别注满泰乐菌素标准工作液(浓度为0.1μg/mL和0.2μg/mL)，于(30±1)℃下培养(17±1)h后翻转平板，除去牛津杯。如有抑菌圈产生，准确测量抑菌圈直径(精确到0.1mm)。
6.结果的计算
如样液抑菌圈的直径小于10mm，即报告为“阴性”。
如样液抑菌圈的直径大于等于10mm，求出每组3个检定平板上样液和参考浓度标准工作液抑菌圈直径的平均值，经校正后，从标准曲线上查出相应的泰乐菌素的浓度，通过式(3)，计算试样中泰乐菌素残留量：
X＝c………………………………(3)
m
式中：X——试样中泰乐菌素残留的含量，mg/kg；
c——从标准曲线上查出的样液中泰乐菌素浓度，μg/mL；
m——每毫升最终样液所代表的试样量，g。
注：如测定结果呈阳性，即所显示抑菌圈直径的平均值大于等于10mm，必要时，尚需进行确证试验(可用液相色谱法，见附录B)，以证明抑菌物确系泰乐菌素。
7.低限和回收率的测定
7.1.测定低限
本方法的测定低限为0.2mg/kg。7.2.回收率
泰乐菌素添加浓度及其回收率的实验数据：
鸡蛋中：0.2mg/kg时，回收率为80.0％；
0.4mg/kg时，回收率为89.6％；
0.8mg/kg时，回收率为92.2％。
鸭蛋中：0.2mg/kg时，回收率为86.3％；
0.4mg/kg时，回收率为93.3％；
0.8mg/kg时，回收率为96.5％。
冰全蛋中：0.2mg/kg时，回收率为80.3％；
0.4mg/kg时，回收率为87.4％；
0.8mg/kg时，回收率为89.1％。