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美国药典对现有残余DNA检测技术的评价

来源:中科院上海生科院湖州营养中心
摘要:正如前面讲过,2015年版的美国药典将新增章节对残余DNA检测进行规范化,那究竟和现有方法有什么不同。为什么最后只确定了一种方法。我们来看看现行美国药典对于残余DNA检测的总体要求[GeneralChapter〈1130〉NUCLEICACID-BASEDTECHNIQUES—APPROACHESFORDETECTINGTRACENUCLE......

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正如前面讲过,2015年版的美国药典将新增章节对残余DNA检测进行规范化,那究竟和现有方法有什么不同?为什么最后只确定了一种方法?我们来看看现行美国药典对于残余DNA检测的总体要求[General Chapter〈1130〉 NUCLEIC ACID-BASED TECHNIQUES—APPROACHES FOR DETECTING TRACE NUCLEIC ACIDS (RESIDUAL DNA TESTING)]。“因为残留DNA涉及到潜在来源(传染性病毒DNA)、管理规程等关键问题,药品监管部门建议必须建立产品的DNA残留检测方法。不论是否成品的常规检测包含DNA残留含量检测,还是工艺开发中已经证实了DNA清除率,残留DNA技术指标和定量分析监测规程都必须确立。分析方法包括杂交法、基于DNA结合蛋白的免疫色谱法(阀值法)、定量PCR(Q-PCR)或其他DNA扩增方法。理想的定量检测方法的灵敏度应该能够检测到约10pg/剂量的残留DNA。杂交法、阀值法和定量PCR方法因为灵敏度可以达到检测要求,所以属于经典方法。”下面我们引用美国药典(USP)<1130>的内容分别介绍一下这三种方法。

杂交法(Hybridization-based):在这种方法中,根据宿主DNA序列设计DNA探针用于测定产品中配对DNA的数量。双链DNA被变性成单链后固定在尼龙膜或硝化纤维膜上,DNA探针被放射或荧光随机掺入标记以后,与膜上固定的样品宿主DNA杂交结合,并在胶片或成像仪对应位置中显现斑点。对于荧光标记的探针,斑点的光密度结果可以在仪器中定量分析。斑点光密度对应结合在目标DNA上的探针数,进而推测出残留DNA的数量。通过目测方法可以半定量地检测样品中残留DNA,仪器读片可以对应斑点光密度绘制标准曲线,对应检测结果更加准确。

DNA结合蛋白免疫阈值法(DNA-BINDING PROTEIN-BASED):这种方法使用DNA结合蛋白和DNA抗体,分四步检测。第一步,通过加热把DNA变性成单链DNA,变性后DNA与偶联了亲和素的DNA结合蛋白以及偶联了尿素酶的DNA单克隆抗体混合反应,液相中的单链DNA、DNA结合蛋白、DNA抗体共同形成序列非特异的复合物。第二步,样品混合液通过生物素标记的膜,亲和素-生物素结合把DNA复合物固定在膜上,洗去非特异吸附。第三步,膜放入检测仪器中与尿素溶液反应,反应产物氨改变溶液pH值并被仪器记录变化。这种pH值的变化直接与样品中的DNA数目相关。第四步,仪器软件自动分析原始数据确定样品中残留DNA数量。

定量PCR法(QUANTITATION PCR-BASED):qPCR方法以其快速、高通量的特点已经被应用于生物制药的一些领域(拷贝数检测与病毒检测)。这项技术能够确定各种样品中目标DNA序列的准确数量。DNA探针的设计非常关键,这种DNA探针包含一端染料分子和另一端淬灭分子。当特殊设计的DNA引物引导DNA聚合酶沿着模板序列复制合成另一条对应序列时,DNA聚合酶切断结合在目标DNA上的探针染料端,释放到反应液里的染料信号被仪器测量。经过数十个循环的DNA扩增,荧光信号与起始DNA模板成对应关系,对应标准曲线可以准确计算出样品中残留DNA的数量。

美国药典附录进一步对三种方法进行了应用评价。杂交法可以序列特异性地检测目标DNA,但32P标记的探针因为存在半衰期短、放射等问题,实际应用并不广泛。荧光标记的探针如果采用仪器读取信号,杂交法理论上可以达到定量检测要求的灵敏度,但是检测时间需要48小时。阈值法因为是采用DNA抗体的非特异序列免疫检测技术,不能特异性识别宿主残留DNA序列,且容易受到环境和操作人员的DNA污染,导致读值偏高。qPCR法具有序列特异性,灵敏度、准确度、精密度都好,还可以高通量筛选,但开发一个合格的q-PCR试剂检测宿主残留DNA并不是件容易的事情。有人会提出疑问,终产品中应该限定任何物种的DNA残余以确保安全性,所以阈值法是不是最合理的分析方法?这里还需要强调一下宿主残余DNA检测的目的:1.确认纯化工艺合理,能有效去除宿主DNA残余;2.确认产品中杂质含量符合标准要求。非特异性的DNA检测结果不能区分究竟是生产中污染、检测污染、或是工艺缺陷引起的DNA残余,就无法为解决方案提供有效信息。在严格的生产体系中,残留DNA检测是解决工艺合理性问题,任何外源污染问题都归SOP或GMP管理体系解决。最后,经典的残留DNA检测方法灵敏度不同,qPCR法、DNA结合法、杂交法的检测限分别达到<1、3、6pg/样品的水平(目前qPCR法灵敏度可达10fg),但是技术上限制,要求待测DNA片段分别不能小于50、150、600bp才能用于杂交法、q-PCR法、阈值法检测,而WHO和FDA可接受的DNA 限度内的片段长度<200bp。由此可见,这三种方法中,qPCR法的适用性和技术指标最好。从qPCR技术原理来看,Taqman法要优于荧光染料随机掺入的SYBR Green法。正如前面介绍的USP修订内容,经过几年来对三种检测方法的系统研究和应用反馈,美国药典会将在新版药典中唯一推荐qPCR法作为生物制品残留DNA检测的标准方法。

作者: 2015-6-11
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