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1 材料与方法
1.1 兔抗肺炎衣原体抗体的制备 用10μl Cpn菌株TW-183(2×10 8 ifu)与300μl福氏完全佐剂混匀后皮下多点注射新西兰白兔(New Zealand white,NZW),在第14、28和42天,用10μl Cpn菌株与300μl福氏不完全佐剂混匀后皮下多点注射NZW,用双向琼脂扩散法鉴定其抗血清效价>(1∶64)后,颈动脉插管放血55ml,分离出血清25ml,用硫酸铵盐析法、DEAE-Sephadex-50层析法逐步纯化兔免疫球蛋白(IgG),用考马氏亮蓝法测其蛋白含量为3.45mg/ml。
1.2 肺炎衣原体抗体荧光素结合物的制备 将纯化的IgG抗体用pH9~9.5碳酸盐缓冲液透析过夜,配制异硫氰酸荧光素(fluorescein isothiacyanate,FITC)二甲亚砜(DMSO)溶液,使终浓度为1mg FITC/1ml DMSO。按50μg FITC/1mg IgG比例将FITC-DMSO溶液逐滴加入透析后的抗体溶液中。标记物用pH9~9.5碳酸盐缓冲液加至2.5ml,再将其装入透析袋,并放在预冷4℃的碳酸盐缓冲液中,于4℃暗处磁力搅拌过夜。然后用PBS于4℃暗处透析5次,以除去游离的FITC,直至透析外液与参比溶液PBS在495nm处吸光度一样。FITC标记物分别在276nm和493nm测定光密度,然后根据计算图算出荧光素(F)与蛋白(P)mol比值,合适的F/P比值为2~4。
1.3 Cpn-PcAb与Cpn-McAb同时检测标本 复旦大学附属金山医院住院患者共294例,其中冠心病、高血压、心肌梗死、糖尿病等患者109例,肺炎、支气管炎、哮喘、肺气肿等患者135例,慢性鼻炎、鼻息肉、鼻窦炎、咽喉炎、扁桃体炎等患者50例。常规无菌采集静脉血3ml,EDTA抗凝。外周血单核细胞(PBMC)分离参照Moazed等 [6] 方法略加修改:抗凝血2000rpm离心5min,吸出血浆后的余血用等体积PBS稀释混匀,再缓慢加到含有3ml淋巴细胞分离液试管中,然后于室温2200rpm离心30min,吸出含有PBMC的中间云雾状层,用PBS洗至不含红细胞后,悬浮于PBS中,使其约含PBMC5×10 6 个。PBMC中Cpn-抗原的检测参照Timms等 [7] 方法略加改进:吸取新鲜制备的PBMC悬浮液10μl(约含PBMC6×10 5 个)分别在载玻片上涂出2个直径4~5mm的圆点,电吹风吹干后丙酮固定3次。其中一个圆点作为空白对照,另一个圆点加上5μl Cpn-McAb(FITC-TT-401)稀释液(工作浓度1∶40,即5μl FITC-TT-401原液+195μl0.01%伊文氏蓝PBS),置湿盒于37℃温育1h,PBS洗3次,每次3min,再用蒸馏水洗3次,电吹风吹干。同时用自制FITC-Cpn-PcAb进行平行操作。然后将载玻片置荧光显微镜下(HB0200汞灯,第一滤片:BG-12,第二滤片:CG-13和WILD8075)由2人观察并核对大小均匀的特征性苹果绿亮点。测定圆点内的荧光亮点数减去空白圆点内的荧光亮点数后的差数,作为特异性抗原阳性的依据。阳性对照:Cpn菌株(TW-185)牛奶稀释液作为抗原,以PBS为阴性对照。抗原阳性判断标准参照Muhlestain等 [8]的标准:强阳性(>100个亮点/原点),阳性(10~100个亮点/原点),阴性(<10个亮点/原点)。
1.4 PCR法检测外周血单核细胞中Cpn-DNA 按笔者已发表的方法进行 [9] 。1.5%凝胶于5V/cm下电泳1h,在紫外灯下观察结果,PCR扩增产物为474bp。
1.5 统计学处理
1.5.1 采用χ 2 检测法 P<0.05为差异有显著性。
1.5.2 采用Kappa值判断两种方法的一致性强度 Kappa值在0.61~0.80,一致性强度属于高度。
2 结果
2.1 Cpn抗体效价和交叉反应鉴定 应用进口可溶性Cpn-脂多糖(LPS)来鉴定,琼脂糖双向免疫扩散结果表明,Cpn抗体效价为1∶64。Cpn抗体与沙眼衣原体-LPS抗原无交叉反应。
2.2 Cpn抗体与进口单抗同时检测PBMC中Cpn-抗原 294例PBMC标本中Cpn-McAb检出Cpn特异性抗原阳性128例,阴性166例;而Cpn-PcAb检出的阳性标本135例,阴性159例,二者之间差异无显著性(P>0.05),见表1。
2.3 Cpn-PcAb检测PBMC中Cpn-抗原方法评估 Cpn -PcAb与Cpn-McAb同时检出PBMC中Cpn-抗原阳性的标本有110例,而PBMC中Cpn-抗原阴性的标本为141例,Kappa值是0.7,根据其判断标准表明:Cpn-PcAb与Cpn-McAb检测结果的一致性强度属于高度,见表2。
表1 Cpn抗体与进口单抗检测PBMC中Cpn-抗原的结果比较 (略)
表2 Cpn抗体检测PBMC中Cpn-抗原方法评价 (略)
2.4 PCR法检测外PBMC中Cpn-DNA结果 20例用Cpn-PcAb经直接微量免疫荧光(DI)法检测出Cpn-抗原阳性的PBMC标本中,用PCR法从17例PBMC中检测到Cpn-DNA;20例用Cpn-PcAb经DI法检测Cpn-抗原阴性的PBMC标本中,用PCR法从3例PBMC中检测到Cpn-DNA。可见自制Cpn-PcAb有较好的敏感性和特异性,见表3。
表3 PCR法和DI法检测PBMC结果比较 (略)
3 讨论
近年来根据流行病调查,发现多种系统疾病都与Cpn感染有关。国外已成功分离出Cpn菌株-183、AR-39、AR-59、AR-458、LR-65等,而且有Cpn活菌和单抗出售,并用阿齐霉素进行较大规模的临床干预试验 [10] 。国内有学者就冠心病患者做了有关Cpn感染的流行病学调查 [11] ,建立了家兔Cpn感染和动脉粥样硬化模型[9] 。目前,临床诊断Cpn感染的依据主要依靠抗体的检测,但是Cpn抗体的检出只能说明该个体感染过Cpn,却不能反映体内是否仍有Cpn活菌存在。而Cpn特异性抗原的检测能直接反映该个体内有无Cpn活菌的存在 [12] ,为此笔者已建立了PBMC中Cpn-抗原的检测方法 [5] ,并用于临床检测,为临床相关疾病的诊治提供可靠依据。但检测Cpn-抗原所用的Cpn单抗目前尚依赖进口,不仅手续麻烦,且价格昂贵。为此,我们采用Cpn菌株感染新西兰白兔,成功地获得纯度较高的家兔抗Cpn-抗体。为了测定其特异性和敏感性,我们用进口单抗(FITC-TT-401)与自制的FITC-Cpn)抗体同时检测294例PBMC中Cpn特异性抗原,阳性标本分别为128例和135例(见表1),同时都为阳性的有110例,同时都为阴性的有141例,Kappa值为0.7(见表2),根据Kappa值判断标准提示自制的Cpn抗体与进口单抗的检测结果具有较好的一致性。
另外,我们随机挑选了20例用Cpn抗体经DI法检测Cpn特异性抗原阳性和20例阴性的PBMC标本,用PCR法检测Cpn-DNA。结果显示阳性组有17例,阴性组有3例检测到Cpn-DNA(见表3)。由此表明,自制的Cpn抗体特异性较好、敏感性较高,可能可以替代进口单抗用于临床Cpn-抗原的检测,有助于Cpn感染相关疾病的诊治,而且为进一步制备Cpn单克隆抗体提供了经验。
参考文献
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6 Moazed TC,Kuo CC,Grayston JT,et al.Evidence of systemic dissemina-tion of Chlamydia pneumoniae via macrophages in the mouse.J Infec Dis,1998,117:1322-1325.
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9 王卫群,袁佶,王岫南,等.家兔的肺炎衣原体感染和动脉粥样硬化模型.上海医科大学学报,2000,27(4):292-294.
10 Dirk Sander,Kerstin Winbeck,Jürgen Klingelh⒐fer,et al.Progression of Early Carotid Atherosclerosis Is Only Temporarily Reduced After An-tibiotic Treatment of Chlamydia pneumoniae Seropositivity.Circulation,2004,109:1010-1015.
11 袁佶,余竹元,黄士通.冠状动脉粥样硬化性疾病患者肺炎衣原体抗体检测.中国人兽共患病杂志,1999,15(1):12-13.
12 Bodetti TJ,Timms P.Detection of Chlamydia pneumoniae DNA and antigen in the circulating mononuclear cell fractions of humans and koalas.Infect Immun,2000,68(5):2744-2747.
作者单位:200540上海复旦大学附属金山医院心内科